Bradyrhizobium Jordan, 1982
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- GENUS
Classification
- class
- Alphaproteobacteria
- order
- Hyphomicrobiales
- family
- Nitrobacteraceae
- genus
- Bradyrhizobium
Abstract
Bradyrhizobium (früher auch Agromonas 1985 oder Photorhizobium et al. 1990) ist eine Gattung gramnegativer Bodenbakterien, von denen viele Stickstoff (d. h. atmosphärischen Stickstoff: Distickstoff N2) fixieren. Die Stickstofffixierung ist ein wichtiger Teil des Stickstoffkreislaufs. Pflanzen können atmosphärischen Stickstoff selbst nicht nutzen; sie sind auf Stickstoffverbindungen wie Nitrate oder stickstofffixierende Symbiosepartner angewiesen.
Artenvielfalt und Wirtsspezifität
Bradyrhizobium-Arten können entweder spezifische oder allgemeine Symbiosen bilden. D. h. eine dieser Spezies ist möglicherweise nur in der Lage, eine einzige Leguminosenart als Wurzelknöllchen-Symbiont zu dienen, während andere Bradyrhizobium-Spezies in der Lage sein kann, mehrere verschiedene Leguminosenarten zu bedienen. Die ribosomale RNA (rRNA) ist in dieser Gruppe von Mikroben stark konserviert, was die Verwendung von Bradyrhizobium als Indikator für die Artenvielfalt äußerst schwierig macht. Stattdessen wurden DNA-DNA-Hybridisierungen verwendet, die eine größere Vielfalt zeigen. Allerdings werden nur wenige phänotypische Unterschiede festgestellt, so dass nicht viele Arten benannt werden konnten. Einige Bradyrhizobium-Stämme sind auch photosynthetisch aktiv, diese bilden dann oft Knöllchen in den Stängeln von semiaquatischen Leguminosen der Gattung AeschynomeneZu den Aeschynomene-Spezies gehören die Indische Schampflanze (Aeschynomene indica), die Shola-Pflanze (Aeschynomene aspera) und der Ambatch-Baum (Aeschynomene elaphroxylon). und wurden auch in den Knöllchenwurzeln des afrikanischen Wildreises Oryza breviligulata (syn. Oryza barthii) gefunden.Der Afrikanische Wildreis: Oryza barthii, auf: flora-obscura.de
Bedeutung
Körnerleguminosen werden auf etwa 1,5 Mio. km² Land pro Jahr angebaut. Die Menge des jährlich fixierten Stickstoffs beträgt weltweit etwa 44–66 Mio. Tonnen, was fast der Hälfte des gesamten in der Landwirtschaft verwendeten Stickstoffs entspricht. Es sind auch kommerzielle Bradyrhizobium-Inokulanzien erhältlich. In der Molekularbiologie wurde Bradyrhizobium (wie auch Rhizobium) als Verunreinigung (Kontamination) von Reagenzien für DNA-Extraktionskits und Reinstwassersystemen identifiziert, was dazu führen kann, dass es fälschlicherweise in Mikrobiota- oder Metagenom-Datensätzen erscheint. Bradyrhizobium wurde auch als Verunreinigung von Reagenzien für DNA-Extraktionskits und Reinstwassersystemen identifiziert, was dazu führen kann, dass es fälschlicherweise in Mikrobiota- oder Metagenom-Datensätzen erscheint.[3] Das Vorhandensein von stickstofffixierenden Bakterien als Verunreinigungen kann auf die Verwendung von Stickstoffgas bei der Reinstwasserproduktion zurückzuführen sein, um das mikrobielle Wachstum in Lagertanks zu hemmen.Susannah J. Salter, Michael J. Cox, Elena M. Turek, Szymon T. Calus, William O. Cookson, Miriam F. Moffatt, Paul Turner, Julian Parkhill, Nicholas J. Loman, Alan W. Walker: Reagent and laboratory contamination can critically impact sequence-based microbiome analyses, in: BMC Biology, Band 12, Nr. 87, 12. November 2014, doi:10.1186/s12915-014-0087-z. PrePrint doi:10.1101/007187. Das Vorhandensein von stickstofffixierenden Bakterien als Verunreinigung kann auf die Verwendung von Stickstoffgas bei der Reinstwasserproduktion zurückzuführen sein, um das mikrobielle Wachstum in Lagertanks zu hemmen.
Beschreibung
Die Bakterien der Gattung Bradyrhizobium sind gramnegative und stäbchenförmig mit beweglich (motil) vermöge einer einzigen polaren (endständigen) oder subpolaren (nicht ganz polaren) Geißel. Sie sind weit verbreitete bodenbewohnende Mikroorganismen, die mit Leguminosen (Hülsenfrüchtlern) symbiotische Beziehungen eingehen können, bei denen sie Stickstoff (N2) im Austausch gegen Kohlenhydrate der Pflanze fixieren. Wie andere Rhizobien sind viele Mitglieder dieser Gattung in der Lage, atmosphärischen Stickstoff in solcher Weise zu fixieren, dass die Produkte für andere Organismen leicht verwertbar sind. Bradyrhizobium-Bakterien sind auch wichtige Bestandteile mikrobieller Gemeinschaften in Waldböden, wobei die aus diesen Böden isolierten Stämme allerdings in der Regel nicht zur Stickstofffixierung oder Knöllchenbildung fähig sind. Sie sind langsam wachsend, im Gegensatz zu den schnell wachsenden Rhizobium-Arten. In einem flüssigen Medium benötigen Bradyrhizobium-Arten etwa 3–5 Tage, um eine mäßige Trübung zu erzeugen, und 6–8 Stunden, um ihre Populationsgröße zu verdoppeln. Sie wachsen am besten mit Pentosen als Kohlenstoffquelle. Einige Stämme (z. B. USDA 6 und CPP) sind in der Lage, Kohlenmonoxid (CO) aerob zu Kohlendioxid (CO2) zu oxidieren.
Etymologie
Die Vorsilbe des Gattungsnamens ‚Brady-‘ bezieht sich auf das lateinisch/griechische Adjektiv bradus für ‚langsam‘. Es weist auf die langsame Wachsgeschwindigkeit von Bradyrhizobium hin. Der restliche Namensteil ‚-rhizobium‘ verweist auf die vergleichbare Lebensweise wie bei der Gattung Rhizobium, nämlich ein Leben (‚-bio‘) in den Wurzelknöllchen von Pflanzen (rhizo bedeutet ‚Wurzel‘).
Knöllchenbildung
Knöllchen () sind Wucherungen an den Wurzeln von Hülsenfrüchten, in denen sich die symbiotischen Bakterien befinden. Die Pflanzenwurzeln scheiden Aminosäuren und Zucker in die Rhizosphäre (Wurzelbereich im Erdboden) aus. Die symbiotischen BakterienKnöllchenbakterien oder Rhizobien im weiteren Sinne sind die eigentlichen Rhizobien (Knöllchenbakterien, Familie Rhizobiaceae), sowie verwandte Bakterien (aus einigen anderen Familien der gemeinsamen Ordnung Hyphomicrobiales, manchmal auch als Rhizobiales bezeichnet). wandern zu den Wurzeln und heften sich an die Wurzelhaare. Die Pflanze setzt daraufhin Flavonoide frei, wodurch in den Bakterien die Expression der so genannten Nod-Genen auslöset wird. Die Expression dieser Gene führt zur Produktion der sog. Nod-Faktoren: Enzymen, die das Aufrollen der Wurzelhaare einleiten. Während dieses Prozesses werden die Bakterien mit den Wurzelhaaren zusammengerollt. Die Bakterien durchdringen die Wurzelhaarzellen mit einem Infektionsfaden (en. ), der durch das Wurzelhaar in die Hauptwurzel wächst. Dies führt dazu, dass sich die infizierten Zellen teilen und ein Knöllchen bilden. Die Bakterien finden sich dann wie bei den Rhizobiaceae in speziell eingerichteten Pflanzenzellen (Bacteroiden) innerhalb Vakuolenstruktur, die Symbiosom genannt wird. Die Hyphomicrobiales/Rhizobiales-Bakterien können nun mit der Stickstofffixierung beginnen. Es sind über 55 Gene bekannt, die mit der Knöllchenbildung (en. ) in Verbindung stehen (Nod-Gene). Das nodD ist für die Expression der anderen nod-Gene unerlässlich. Es sind insgesamt zwei nodD-Gene bekannt: nodD1 und nodD2, aber nur nodD1 wird für eine erfolgreiche Knöllchenbildung benötigt.
Phylogenie
Die gegenwärtig akzeptierte Taxonomie der Gattung Bradyrhizobium basiert auf der , die Phylogenie basiert auf der Analyse des gesamten Genoms:
Stickstofffixierung
Bradyrhizobium und andere in den Knöllchen lebende Rhizobiales-Bakterien nehmen atmosphärischen Stickstoff (N2) auf und binden ihn in Ammoniak (NH3) oder Ammonium (NH4+). Die Pflanzen selbst können atmosphärischen Stickstoff nicht nutzen, sie müssen eine Verbindung des Elements verwenden. Nach der Photosynthese ist die Stickstofffixierung der wichtigste Prozess für das Wachstum und die Entwicklung von Pflanzen. Der Gehalt an Ureid-Stickstoff in einer Pflanze korreliert mit der Menge des fixierten Stickstoffs, den die Pflanze aufnimmt. Wichtige bei Bradyrhizobium an der Stickstofffixierung beteiligte Gene sind nif und fix. Die nif-Gene sind den Genen von Klebsiella pneumoniae, einem freilebenden diazotrophen Bakterium der Klasse Gammaproteobacteria, in Funktion und Struktur sehr ähnlich, obwohl sie nicht wie Bradyrhizobium der Klasse Alphaproteobacteria angehören. Die für die symbiotische Stickstofffixierung wichtigen fix-Gene wurden zuerst bei den symbiotischen Bakterien der Ordnung Hyphomicrobiales (alias Rhizobiales) gefunden. Die nif- und fix-Gene befinden sich in mindestens zwei verschiedenen Clustern auf dem Bakterien-Chromosom. Cluster I enthält die meisten Stickstofffixierungsgene. Cluster II enthält drei fix-Gene, die in der Nähe der nod-Gene (s. o.) liegen.
Systematik
Der folgenden Systematik liegt die mit Stand vom 23. Mai 2021 zugrunde.LPSN: Gattung: Bradyrhizobium 1982 (syn. Agromonas 1985)NCBI: Bradyrhizobium Jordan 1982 (genus, syn. Agromonas Ohta and Hattori 1985); graphisch: Bradyrhizobium, auf: Lifemap, NCBI Version.
Bestätigte Arten Die Gattung Bradyrhizobium umfasst die folgenden Arten (Spezies):
B. agreste et al. 2021 B. algeriense et al. 2019 B. americanum et al. 2017 B. amphicarpaeae et al. 2019 B. arachidis et al. 2013 B. archetypum et al. 2020 B. australiense et al. 2020 B. betae et al. 2004B. betae wurde aus tumorartigen Wurzeldeformationen an Zuckerrüben isoliert, ihr symbiotischer Status ist unbekannt. B. cajani et al. 2017 B. canariense et al. 2005B. canariense bildet Wurzelknöllchen bei genistoiden Schmetterlingsblütlern ([en]), die auf den Kanarischen Inseln heimisch sind. Die Art wurde auch in Knöllchen von Lupinen und Serradella in Westaustralien und im südlichen Afrika gefunden. Zur Klade der genistoiden Schmetterlingsblütler siehe Genistoid clade, tolweb.org (Tree of Life Web Project). B. centrosematis et al. 2017Bradyrhizobium centrosemae ist eine Fehlschreibung von Bradyrhizobium centrosematis. B. cosmicum et al. 2020 B. cytisi et al. 2011 B. daqingense et al. 2012 B. denitrificans et al. 2011 B. diazoefficiens et al 2013 B. diversitatis et al. 2021 B. elkanii et al. 1993 B. embrapense et al. 2015 B. erythrophlei et al. 2015 B. ferriligni et al. 2015 B. frederickii et al. 2019 B. ganzhouense et al. 2014 B. glycinis et al. 2021 B. guangdongense et al. 2015 B. guangxiense et al. 2015 B. hipponense et al. 2020 B. huanghuaihaiense et al. 2012 B. icense et al. 2014 B. ingae et al. 2014 B. iriomotense et al. 2010 B. ivorense et al. 2020 B. japonicum 1982 – TypusB. japonicum erzeugt Wurzelknöllchen bei Sojabohnen, Augenbohnen, Mungobohnen und Siratro (Macroptilium atropurpureum). Zu Siratro siehe
R. Hegnauer: Chemotaxonomie der Pflanzen, Band 33, Birkhäuser, Basel, 1994, S. 1–97, doi:10.1007/978-3-0348-8494-5_1, Online ISBN 978-3-0348-8494-5; hier: Bemerkung #335. Elisabeth Piras: Reis ist Leben, Wie Öko-Landbau und Fairer Handel zu Ernährungssouveränität führen, April 2011, auf: naturland.de
B. j. symbiovar genistearum B. j. symbiovar glycinearum B. jicamae et al. 2009 B. kavangense et al. 2015 B. lablabi et al. 2011 B. liaoningense et al. 1995B. elkanii, B. diazoefficiens und B. liaoningense bilden Symbiosen mit Sojabohnen. B. lupini et al. 2015 B. manausense et al. 2014 B. mercantei et al. 2017 B. murdochi et al. 2020 B. namibiense et al. 2017 B. nanningense et al. 2020 B. neotropicale et al. 2014B. neotropicale bildet Symbiosen mit dem Baum Centrolobium paraense aus dem Amazonas-Regenwald in Brasilien. B. niftali et al. 2019 B. nitroreducens et al. 2020 B. oligotrophicum et al. 2013 B. ottawaense et al. 2014 B. pachyrhizi et al. 2009 B. paxllaeri et al. 2014 B. retamae et al. 2013 B. rifense et al. 2012 B. ripae et al. 2018 B. shewense et al. 2018 B. stylosanthis et al. 2016 B. subterraneum et al. 2015 B. symbiodeficiens et al. 2020 B. tropiciagri et al. 2015 B. vignae et al. 2016 B. viridifuturi et al. 2015 B. yuanmingense et al. 2002B. yuanmingense bildet Wurzelknöllchen bei Buschklee (Lespedeza)
Vorläufig zugewiesene Arten Die folgenden Arten wurden zwar beschrieben, aber nicht nach dem (ICNB) validiert:
„B. brasilense“ Martins da Costa et al. 2017 „B. campsiandrae“ Cabral Michel et al. 2021 „B. centrolobii“ Michel et al. 2017 „B. forestalis“ Martins da Costa et al. 2018 „B. guangzhouense“ Li et al. 2019 „B. macuxiense“ Michel et al. 2017 „B. sacchari“ de Matos et al. 2017 „B. uaiense“ Cabral Michel et al. 2020 „B. valentinum“ Durán et al. 2014 „B. zhanjiangense“ Li et al. 2019 „B. sp. USDA 4362“ (syn. Photorhizobium thompsonianum BTAi1NCBI: Bradyrhizobium sp. USDA 4362 (species))
Eine Gattung „Photorhizobium“ wird bei LPSN nicht gelistet, nur beim , dort aber mit einer ganzen Reihe vorläufig benannter Arten.NCBI: Photorhizobium (genus), und Photorhizobium (list/token) Es ist daher nicht ganz klar, ob die gesamte (vorgeschlagene oder vorläufige) Gattung Photorhizobium nun Bradyrhizobium zugeschlagen werden kann, oder nur die eine bezeichnete Spezies.
Bestätigte Arten Die Gattung Bradyrhizobium umfasst die folgenden Arten (Spezies):
B. agreste et al. 2021 B. algeriense et al. 2019 B. americanum et al. 2017 B. amphicarpaeae et al. 2019 B. arachidis et al. 2013 B. archetypum et al. 2020 B. australiense et al. 2020 B. betae et al. 2004B. betae wurde aus tumorartigen Wurzeldeformationen an Zuckerrüben isoliert, ihr symbiotischer Status ist unbekannt. B. cajani et al. 2017 B. canariense et al. 2005B. canariense bildet Wurzelknöllchen bei genistoiden Schmetterlingsblütlern ([en]), die auf den Kanarischen Inseln heimisch sind. Die Art wurde auch in Knöllchen von Lupinen und Serradella in Westaustralien und im südlichen Afrika gefunden. Zur Klade der genistoiden Schmetterlingsblütler siehe Genistoid clade, tolweb.org (Tree of Life Web Project). B. centrosematis et al. 2017Bradyrhizobium centrosemae ist eine Fehlschreibung von Bradyrhizobium centrosematis. B. cosmicum et al. 2020 B. cytisi et al. 2011 B. daqingense et al. 2012 B. denitrificans et al. 2011 B. diazoefficiens et al 2013 B. diversitatis et al. 2021 B. elkanii et al. 1993 B. embrapense et al. 2015 B. erythrophlei et al. 2015 B. ferriligni et al. 2015 B. frederickii et al. 2019 B. ganzhouense et al. 2014 B. glycinis et al. 2021 B. guangdongense et al. 2015 B. guangxiense et al. 2015 B. hipponense et al. 2020 B. huanghuaihaiense et al. 2012 B. icense et al. 2014 B. ingae et al. 2014 B. iriomotense et al. 2010 B. ivorense et al. 2020 B. japonicum 1982 – TypusB. japonicum erzeugt Wurzelknöllchen bei Sojabohnen, Augenbohnen, Mungobohnen und Siratro (Macroptilium atropurpureum). Zu Siratro siehe
R. Hegnauer: Chemotaxonomie der Pflanzen, Band 33, Birkhäuser, Basel, 1994, S. 1–97, doi:10.1007/978-3-0348-8494-5_1, Online ISBN 978-3-0348-8494-5; hier: Bemerkung #335. Elisabeth Piras: Reis ist Leben, Wie Öko-Landbau und Fairer Handel zu Ernährungssouveränität führen, April 2011, auf: naturland.de
B. j. symbiovar genistearum B. j. symbiovar glycinearum B. jicamae et al. 2009 B. kavangense et al. 2015 B. lablabi et al. 2011 B. liaoningense et al. 1995B. elkanii, B. diazoefficiens und B. liaoningense bilden Symbiosen mit Sojabohnen. B. lupini et al. 2015 B. manausense et al. 2014 B. mercantei et al. 2017 B. murdochi et al. 2020 B. namibiense et al. 2017 B. nanningense et al. 2020 B. neotropicale et al. 2014B. neotropicale bildet Symbiosen mit dem Baum Centrolobium paraense aus dem Amazonas-Regenwald in Brasilien. B. niftali et al. 2019 B. nitroreducens et al. 2020 B. oligotrophicum et al. 2013 B. ottawaense et al. 2014 B. pachyrhizi et al. 2009 B. paxllaeri et al. 2014 B. retamae et al. 2013 B. rifense et al. 2012 B. ripae et al. 2018 B. shewense et al. 2018 B. stylosanthis et al. 2016 B. subterraneum et al. 2015 B. symbiodeficiens et al. 2020 B. tropiciagri et al. 2015 B. vignae et al. 2016 B. viridifuturi et al. 2015 B. yuanmingense et al. 2002B. yuanmingense bildet Wurzelknöllchen bei Buschklee (Lespedeza)
Vorläufig zugewiesene Arten Die folgenden Arten wurden zwar beschrieben, aber nicht nach dem (ICNB) validiert:
„B. brasilense“ Martins da Costa et al. 2017 „B. campsiandrae“ Cabral Michel et al. 2021 „B. centrolobii“ Michel et al. 2017 „B. forestalis“ Martins da Costa et al. 2018 „B. guangzhouense“ Li et al. 2019 „B. macuxiense“ Michel et al. 2017 „B. sacchari“ de Matos et al. 2017 „B. uaiense“ Cabral Michel et al. 2020 „B. valentinum“ Durán et al. 2014 „B. zhanjiangense“ Li et al. 2019 „B. sp. USDA 4362“ (syn. Photorhizobium thompsonianum BTAi1NCBI: Bradyrhizobium sp. USDA 4362 (species))
Eine Gattung „Photorhizobium“ wird bei LPSN nicht gelistet, nur beim , dort aber mit einer ganzen Reihe vorläufig benannter Arten.NCBI: Photorhizobium (genus), und Photorhizobium (list/token) Es ist daher nicht ganz klar, ob die gesamte (vorgeschlagene oder vorläufige) Gattung Photorhizobium nun Bradyrhizobium zugeschlagen werden kann, oder nur die eine bezeichnete Spezies.
Name
- Homonyms
- Bradyrhizobium Jordan, 1982
- Bradyrhizobium
- Common names
- 10.1101/007187 in language.