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Corales, macroalgas y fauna asociada a los arrecifes de Bajo Nuevo, Reserva de la Biosfera Seaflower

Citation

Gómez Cubillos C, Zea S, Daza Guerra C A, Lozano Mendoza N A (2023). Corales, macroalgas y fauna asociada a los arrecifes de Bajo Nuevo, Reserva de la Biosfera Seaflower. Version 1.3. Universidad Nacional de Colombia. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/2ke98s accessed via GBIF.org on 2025-07-10.

Description

En el marco de la expedición Seaflower 2021, realizada en Isla Cayos de Bajo Nuevo, dentro de la Reserva de la Biosfera Seaflower, se estimó la cobertura bentónica, signos de enfermedad coralina y frecuencia de interacciones coral-césped. En las 12 estaciones evaluadas, se registró la presencia de 31 especies de coral, 29 de corales pétreos y 2 de hidrocorales; de las cuales, 4 especies son nuevos registros para Isla Cayos de Bajo Nuevo. La mayor riqueza se registró en el hábitat de laguna arrecifal y la más baja en la terraza del arrecife frontal. Las macroalgas fueron los organismos más abundantes (61,4 %), particularmente las algas tipo césped (36,9 %), seguido por los corales y milepóridos (17,3 %), otros invertebrados (7,0 %) y el sustrato abiótico (14,4%).

Sampling Description

Study Extent

Isla Cayos de Bajo Nuevo, Archipiélago de San Andrés, Providencia y Santa Catalina, dentro de la reserva de la biosfera Seaflower.

Sampling

En noviembre de 2021, a lo largo de 12 estaciones se estimó la cobertura bentónica, signos de enfermedad coralina y frecuencia de interacciones coral-césped, evaluando por estación un transecto de banda (10 x 2 m) con 10 cuadrantes de 0,25 m2. Adicionalmente, se analizaron los sedimentos acumulados en la interfaz coral-césped y se evaluó la estructura de los ensamblajes de céspedes algales que interactúan con tejido coralino vivo, a partir de muestras recolectadas de colonias masivas con bordes de interacción activos con céspedes algales.

Quality Control

Ajuste de diferentes elementos del DwC: Realizado por el Equipo Coordinador del SIB Colombia de acuerdo a la naturaleza de los datos. Validación de las plantillas DwC con la herramienta GBIF Validator.

Method steps

  1. Cobertura bentónica, riqueza coralina, signos de enfermedad coralina y frecuencia de interacciones coral-césped y coral-otras categorías: Por estación se evaluó un transecto de banda (10 x 2 m). Para ello, sobre cada transecto, cada metro y alternando de derecha a izquierda, guiados por una cinta métrica, se ubicó un cuadrante de 0,25 m2, subdividido en 25 cuadriculas, para evaluar por transecto un área total de 2,5 m2 (Gómez-Cubillos et al., 2019). Con cámara digital Canon Powershot G7 con caja estanca se tomaron fotografías de los cuadrantes completos y de porciones de ellos para lograr mayor detalle y con cámara GoPro Hero 9, se tomaron videos del paisaje en cada estación. Las imágenes se organizaron en carpetas por estación y se realizó una primera revisión para estimar la riqueza de especies coralinas e identificar signos asociados con enfermedades coralinas, tomando como referencia las guías de Raymundo et al. (2008); Weil y Rogers (2011) y Weil et al. (2019). Luego, con el programa de acceso libre ImageJ 1.52v se procesaron las fotografías de cada cuadrante para: - Calcular por estación la cobertura de las categorías bentónicas descritas por CARICOMP (2001) y Garzón-Ferreira et al. (2002): corales duros y milepóridos (por especie), macroalgas (frondosas, costrosas y céspedes), corales blandos, esponjas (erectas e incrustantes) y sustrato abiótico (arena y escombros). El cálculo de la cobertura total y relativa por categoría se realizó sobre una grilla de 100 puntos aleatorios en cada cuadrante (%). Luego, empleando polígonos y capas con la herramienta ROI Manager se calculó la cobertura en área (cm2) por especie coralina. - Estimar por especie coralina y tipo colonial la frecuencia (%), índice de ocurrencia (%) y perímetro (cm) de interacciones coral-césped y coral-otras categorías bentónicas (Gómez-Cubillos et al., 2019). - Evaluar por especie coralina y tipo colonial, el resultado aparente de las interacciones, a partir de los siguientes criterios: coral pierde cuando se observan daños visibles del tejido coralino en la interfaz (cambios de coloración, discontinuidad tegumentaria, necrosis) ocasionados por sombreado, recubrimiento o contacto directo con el oponente; coral gana cuando los pólipos en el borde forman elevaciones a manera de labios o montículos que evaden la interacción y aparentemente neutra cuando el tejido coralino y el competidor se encuentran en un mismo nivel (ángulo 180º) y no se observa deterioro de los pólipos en la interfaz (Gómez-Cubillos et al., en prensa). *Esta actividad se encuentra en desarrollo.
  2. Estructura de los ensamblajes de céspedes algales que interactúan con tejido coralino vivo: En cada estación, se seleccionaron entre 1 y 2 colonias de corales masivos morfológicamente contrastantes según su tipo de organización colonial (meandroide, plocoide, cerioide) que tuvieran bordes de interacción activos con céspedes algales. Antes de iniciar los procedimientos de extracción se tomaron fotografías de toda la colonia y macros de los bordes de interacción de interés, para identificar signos de actividad en la interfaz (cambios de coloración, pérdida de continuidad tegumentaria, necrosis, recubrimiento, etc.) (Gómez-Cubillos et al., 2019). Una vez seleccionada la interacción, sobre esta, se ubicó un marco de caucho (neumático de llanta) rectangular de 4,5 cm2 (3 cm de largo x 1,5 cm de ancho, simulando un campo quirúrgico) y, con una jeringa de 20 cm3 se succionaron cuidadosamente los sedimentos acumulados en el área delimitada por el dispositivo (Gómez-Cubillos et al., 2020). Luego, sobre la misma porción de ese borde de interacción, se extrajo un núcleo de esqueleto coralino, empleando un martillo y un sacabocado de impacto de 27 mm de diámetro (5,7 cm2) (Gómez-Cubillos et al., 2020). Las muestras recolectadas se rotularon y fijaron con alcohol al 96 %. Los sedimentos se almacenaron en tubos Falcon de 50 ml y los núcleos en tarros plásticos con taparrosca de 200 ml. Las muestras se mantuvieron en nevera (~6 ºC) hasta su procesamiento. Siguiendo la metodología propuesta por Gómez-Cubillos et al. (2020), se realizó la descripción estructural de los ensamblajes de céspedes que interactúan con tejido coralino. Para ello, los núcleos recolectados en campo se revisan en húmedo empleando un estereoscopio Zeiss-DiscoveryV8 (1,0 - 4,0 X). Por núcleo se estima la altura del dosel y la densidad aparente de filamentos. Por morfotipo algal, se toman fotografías con microscopio óptico Zeiss-AX10 con cámara digital DCM510-CMOS, se preservan muestras en viales plásticos individuales y se elaboran montajes permanentes en placas portaobjeto. La identificación de cada morfotipo se realiza a partir de la descripción macro y microscópica, el uso de claves taxonómicas especializadas y la consulta de expertos.

Taxonomic Coverages

El componente de animales está compuesto por 332 registros que representan 55 morfotipos, de los cuales 44 se identificaron a nivel de especie; distribuidos en 6 phyla (principalmente Cnidaria, y en menor proporción, Porifera, Echinodermata, Chordata, Mollusca y Arthropoda), 17 órdenes, 31 familias y 47 géneros. La organización de los taxa se presenta a nivel de familias y para un registro superfamilia.
  1. Acroporidae
    rank: family
  2. Actiniidae
    rank: family
  3. Agariciidae
    rank: family
  4. Astrocoeniidae
    rank: family
  5. Briareidae
    rank: family
  6. Chondrillidae
    rank: family
  7. Cladocoridae
    rank: family
  8. Dasyatidae
    rank: family
  9. Diadematidae
    rank: family
  10. Didemnidae
    rank: family
  11. Echinometridae
    rank: family
  12. Erythropodiidae
    rank: family
  13. Faviidae
    rank: family
  14. Ginglymostomatidae
    rank: family
  15. Gorgoniidae
    rank: family
  16. Holothuriidae
    rank: family
  17. Merulinidae
    rank: family
  18. Milleporidae
    rank: family
  19. Montastraeidae
    rank: family
  20. Muricidae
    rank: family
  21. Ovulidae
    rank: family
  22. Palinuridae
    rank: family
  23. Plexaurellidae
    rank: family
  24. Plexauridae
    rank: family
  25. Pocilloporidae
    rank: family
  26. Poritidae
    rank: family
  27. Rhizangiidae
    rank: family
  28. Ricordeidae
    rank: family
  29. Sphenopidae
    rank: family
  30. Strombidae
    rank: family
  31. Urotrygonidae
    rank: family
  32. Paguroidea
    rank: superfamily
El componente de plantas y macroalgas está compuesto por 89 registros que representan 16 morfos de macroalgas y 1 especie de angiosperma, distribuidos en 4 clases (Phaeophyceae, Ulvophyceae, Florideophyceae, Magnoliopsida) 6 órdenes, 10 familias y 16 géneros. La organización de los taxa se presenta a nivel de género para las macroalgas y a especie para la planta.
  1. Dictyota
    rank: genus
  2. Padina
    rank: genus
  3. Stypopodium
    rank: genus
  4. Turbinaria
    rank: genus
  5. Lobophora
    rank: genus
  6. Dictyopteris
    rank: genus
  7. Halimeda
    rank: genus
  8. Dictyosphaeria
    rank: genus
  9. Valonia
    rank: genus
  10. Amphiroa
    rank: genus
  11. Penicillus
    rank: genus
  12. Caulerpa
    rank: genus
  13. Rhipocephalus
    rank: genus
  14. Avrainvillea
    rank: genus
  15. Udotea
    rank: genus
  16. Thalassia testudinum
    rank: species

Geographic Coverages

Isla Cayos de Bajo Nuevo, Archipiélago de San Andrés, Providencia y Santa Catalina, dentro de la reserva de la biosfera Seaflower.

Bibliographic Citations

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  4. CARICOMP. 2001. Methods manual levels 1 and 2: Manual of Methods for mapping and monitoring of physical and biological parameters in the coastal zone of the Caribbean. CARICOMP Data Management Center, Univ. West Indies (Eds.). Kingston. 93 p. - https://biogeodb.stri.si.edu/physical_monitoring/downloads/caricomp_manual_2001.pdf
  5. Garzón-Ferreira, J., M.C. Reyes-Nivia y A. Rodríguez-Ramírez. 2002. Manual de métodos del SIMAC – Sistema Nacional de Monitoreo de Arrecifes Coralinos en Colombia. 61 p. - http://www.invemar.org.co/redcostera1/invemar/docs/msimac/simac_metodos1.pdf
  6. CORALINA. 2011. Expedición científica de recolección de datos biológicos a Serrana, Roncador y primera aproximación al conocimiento de las comunidades coralina e íctica de los complejos arrecifales de Serranilla, Bajo Alicia y Bajo Nuevo – Colombia, sección norte de la Reserva de la Biosfera Seaflower, Caribe occidental. 2010. Informe técnico. 56 p. -
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  16. Smith, J.E., M. Shaw, R.A. Edwards, D. Obura, O. Pantos, E. Sala, S.A. Sandin, S. Smriga, M. Hatay y F.L. Rohwer. 2006. Indirect effects of algae on coral: algae-mediated, microbe-induced coral mortality. Ecology Letters, 9: 11 p. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1461-0248.2006.00937.x
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