Estudio de Biodiversidad Mina Calenturitas, Temporada de Lluvias

Study Extent

El muestreo se realizó en las áreas Biosensoras y en Proceso de Rehabilitación, ubicadas en el interior de la Mina Calenturitas (departamento de Cesar, municipios de La Jagua de Ibirico, El Paso y Becerril)

Sampling

Para la caracterización de la herpetofauna se realizaron caminatas de búsqueda libre al azar durante día y la noche, en un lapso comprendido entre las 8:00 y las 21:00 horas, las cuales se complementaron con la realización de parcelas de hojarasca de 5x5m. Para el estudio de la avifauna se llevaron a cabo transectos en franjas entre las 06:00 h a las 10:30 h y 15:30 h a las 17:30 h y también se instalaron redes de niebla, las cuales se mantuvieron abiertas en los periodos 05:30 h a 10:30 h y 15:30 h a 17:30 h. El inventario de la mastofauna se realizó mediante observación y captura, a través del uso de trampas Sherman, cámaras trampas, redes de niebla, colectas manuales, recorridos, registros indirectos y búsqueda de rastros. Para la caracterización de lepidoptera se realizaron capturas con la instalación de trampas Van Someren Rydon y transectos con el uso de jama; además, para la caracterización tanto de los hymenopteros como de los coleopteros, se utilizaron trampas de caída.

Method steps

1. AVES Con el fin de caracterizar la avifauna presente en la mina Calenturitas durante la temporada de lluvias, se realizaron dos (2) metodologías: recorridos de observación e instalación de redes de niebla. La primera se llevó acabo en los periodos de mayor actividad de las aves (5:00 - 10:00 y 16:00 – 18:00) en las cuales se recorrieron las áreas y se realizó la identificación y toma de datos de abundancia de las aves, ya sea por observación directa del individuo o por la identificación de las vocalizaciones. Es importante resaltar que no se realizaron grabaciones de los cantos. Así mismo, para cada organismo registrado se tomaron anotaciones de importancia ecológica, tales como tipo de vegetación, agrupación con otros individuos, entre otros. De manera complementaria, se instalaron redes de niebla de 12 m largo por 2,5 m de ancho en las áreas de Maracas-Tucuy y Caimancito, las cuales se mantuvieron abiertas durante las horas de mayor actividad de las aves (5:00- 10:00 y 16:00 – 18:00) y fueron revisadas constantemente para evitar estrés y muertes fortuitas de las aves. Los individuos capturados se liberaron delicadamente de las redes y se trasladaron en bolsas de tela individuales a un área cercana para su manipulación e identificación a través de la toma de fotografías y medidas morfológicas con la ayuda de un pie de rey digital, tales como culmen total, ancho y alto del pico, longitud del ala, cola y tarso, entre otras. Finalmente, con el fin de registrar las recapturas, se realizó un marcaje temporal no invasivo a través del corte de una pluma timonera, para luego liberar al individuo en el mismo sitio de su captura. Ningún organismo fue sacrificado dado que se logró la identificación certera de todos In situ. Con los datos obtenidos en campo, se realizó su depuración en Excel para la construcción de bases de datos y archivos formato Geodatabase, con el fin de calcular la composición (riqueza) y abundancia de las comunidades de aves; también se consultó bibliografía específica para realizar el análisis de los gremios tróficos y el establecimiento de especies sensibles, como el Sistema de Información Sobre Biodiversidad de Colombia SIB (disponible online a través de http://www.sibcolombia.net/), así como Bird Life International (disponible en http://www.birdlife.org), entre otras. Para la realización de todo el documento, se siguió la taxonomía actualizada determinada por Remsen Et ál, versión de octubre de 2015. Finalmente, los cálculos de los índices de diversidad (Shannon Wiener, Simpson y Equitability), así como del análisis de similitud se utilizó el programa Past3®, mientras que la curva de acumulación de especies se construyó con la ayuda del programa EstimateS 8.2 ®. MAMÍFEROS Para la captura de murciélagos se utilizaron tres redes de niebla de 12 m largo x 2,5 m de ancho. Estas fueron instaladas en las áreas Biosensoras de Maracas – Tucuy, Caimancito y Bajo inundable; se extendieron al interior y en borde de bosque y fueron reubicadas cada noche para abarcar mayor área. La apertura de las redes fue realizada desde las 18:00h hasta las 21:00h y se revisaron con intervalos de 30 minutos. Se registraron los siguientes datos de los murciélagos capturados: morfometría según Barquez (1987), sexo, condición reproductiva, estado de desarrollo y georreferenciación. Posteriormente se realizó la identificación taxonómica de los murciélagos con claves propuestas por Linares (1986), Timm et al., (1999) y Solari et al., (2013). Después de obtener los datos de colecta, los murciélagos se marcaron en la pata con esmalte para registrar posteriores recapturas y a continuación fueron liberados. Para la captura de pequeños mamíferos se emplearon 20 trampas tipo Sherman, que fueron cebadas con una mezcla de avena, banano y esencia de vainilla; las trampas se ubicaron a nivel del suelo, cerca de refugios, en hojarasca, matorrales, caminaderos y sobre árboles, a lo largo de transeptos. Se activaron en las horas de la mañana y se inspeccionaron al día siguiente en cada área Biosensora. Por otra parte, se instalaron 10 cámaras digitales de rastreo Bushnell, con tarjeta de memoria de 8Gb, en aquellos lugares en donde se evidenció algún rastro, madriguera o indicio de un mamífero; Las cámaras fueron programadas para funcionar por un periodo de actividad de 24 horas, durante los días muestreados en cada área Biosensora. Se utilizaron como atrayentes, latas de sardina estacadas a un palo y se esparció por el suelo cuido para perros. De manera complementaria, se llevaron a cabo recorridos diurnos y nocturnos de longitud no definida, observando cautelosa y silenciosamente cualquier movimiento en el dosel de los árboles y sobre el suelo. En horas nocturnas se utilizaron linternas de alta potencia para iluminar los animales y así lograr su identificación. Para los mamíferos encontrados, se tomaron los siguientes datos: fecha, hora, hábitos alimenticios, número de individuos, tipo de hábitat y especie. Además, se registró toda evidencia de alimentación o de actividad que pudiera identificarse como rastro de un mamífero, tales como huellas, excremento, comederos, hozaderos y madrigueras. Para la identificación de las huellas se fotografiaron y se empleó el Manual de Navarro & Muñoz (2000). La representatividad del muestreo se evaluó usando curvas de acumulación de especies con la ayuda del software EstimateS (Colwell 2005). Este programa calcula una curva de rarefacción de las especies observadas por cada día muestreado y estima las especies probables en el área con base en estimadores no paramétricos (Chao1 y CAO) que nos permiten establecer tanto el momento en el que el muestreo se completa, como el número total de las especies esperadas para el sitio (Colwell y Coddington 1994). HERPETOS Para la caracterización de la Herpetofauna en las diferentes áreas tanto biosensoras como en recuperación, se realizaron muestreos mediante la metodología de búsqueda libre y sin restricciones abarcando el mayor número posible de hábitats, representados por las unidades de cobertura, desde el 16 al 28 de octubre del 2015. Consistió en realizar caminatas, buscando anfibios y reptiles, sin que existieran demasiadas reglas para la búsqueda, a excepción de revisar minuciosamente todos los microhábitats disponibles como cuerpos de agua (charcos, caños, lagunas y quebradas, bajos inundables), caminos o trochas dentro del bosque; refugios como troncos, piedras, agujeros, hojarasca o material en descomposición. stos recorridos se llevaron a cabo durante el día y la noche, en un lapso comprendido entre las 8:00 y las 21:00 horas. Para el caso de capturas posibles, se tuvo en cuenta tener todo el cuidado necesario para no afectar el bienestar de los individuos; en especial, para el caso de las serpientes se empleó la ayuda de una pinza herpetológica, evitando riesgos de mordida (sin importar que se tratase o no de especies venenosas). Se realizaron dos recorridos diarios (diurno y nocturno) en cada una de las áreas de muestreo tanto en zonas biosensoras como en áreas en proceso de rehabilitación, para el registro de las diferentes especies de anfibios y reptiles en la mayoría de hábitats (Tabla 1 1). Durante los muestreos realizados en el área biosensora Caimancito fue colectado un ejemplar de la falsa mapaná (Leptodeira septentrionalis). Se realizaron dos recorridos diarios (diurno y nocturno) en cada una de las áreas de muestreo tanto en zonas biosensoras como en áreas en proceso de rehabilitación, para el registro de las diferentes especies de anfibios y reptiles en la mayoría de hábitats. ESCARABAJOS COPRÓFAGOS Se realizó un transecto lineal de 300m, seccionado en cinco unidades muestreales, separadas entre sí cada 60m; en cada unidad, se instaló una pitfall activa (trampa de caída cebada con copro de omnívoro), esta trampa consiste en enterrar al nivel del suelo un vaso desechable de 16 onzas de capacidad, lleno un tercio con una solución de alcohol al 50%, posteriormente se ubica por encima, un vaso de una (1) onza, lleno con 20g de heces de omnívoro, sujeto a un alambre de 15cm de largo en forma de L invertida (Brown, 1982), estas trampas se instalan por un período de24 horas. MARIPOSAS DIURNAS La colecta de mariposas se realizó utilizando la red entomológica o jama tipo mariposero, conformada por un aro metálico entre 50cm a 70cm al que va unido un tul de forma cónica, sostenida por una vara de metal, que da soportea todo elinstrumento. La captura con jama se realiza mediante recorridos en el interior de la parcela desde las 7:00 AM hasta las 5:00 PM, para obtener un mejor ajuste de los muestreos, se adicionó la utilización de trampas tipo Van SomerenRydon. Estas trampas se revisaron de modo alterno, al tiempo que se hacían recorridos con la red entomológica. Los individuos colectados fueron sacrificados mediante Digitalización toraxica o “pincin”, luego se depositaron en sobres triangulares de papel pergamino y posteriormente fueron trasladados al laboratorio para su determinación taxonómica. HORMIGAS Se aplicaron métodos de colecta variados, dentro de un transecto lineal de 100m, dividido en 5 secciones, separadas 20m entre sí, en cada una ellas, se instaló una pitfall activa, para aquellas que colonizan y transitan el suelo. Esta trampa consiste en enterrar al nivel del suelo un vaso de 12 onzas disimulado con hojarasca, lleno un tercio con una solución de alcohol al 50%, posteriormente se ubica por encima, un vaso de una (1) onza, lleno con 20g de bocadillo y galleta, sujeto a un alambre de 15cm de largo en forma de L invertida (Brown, 1982), estas trampas se instalan por un período de 24 horas por localidad. Otra técnica utilizada fue la búsqueda activa o captura manual, que se basa en la inspección de microhábitats, donde pueden interactuar especies que notransiten mucho el suelo, como corteza de árboles, huecos en las rocas, ramas, etc. Con la ayuda de pinceles y pinzas entomológicas, esta búsqueda se realiza durante el día, por localidad. Los organismos colectados se fijan y conservan siguiendo las debidas labores curatoriales; se utilizan claves taxonómicas para géneros y especies de Coleoptera: Scarabaeidae (Vitolo 2000, Medina & Lopera 2001); Lepidoptera (DeVries 1986, 1996) e Hymenoptera: Formicidae (Fernández 2003). Los datos de riqueza y abundancia de insectos, obtenidos durante el muestreo fueron organizados en matrices en excel, donde se aplicó estadística descriptiva para definir distribuciones de abundancia por especies y organismos representativos. Se utilizó el programa PAST para realizar análisis de similitud entre estaciones de muestreos, así mismo, se realizaron los índices ecológicos de diversidad, dominancia y equitatividad con este software de libre uso. Se realizaron curvas de estimación de número de especies en los sitios correspondientes a estaciones biosensoras y zonas en proceso de recuperación, utilizando el paquete ESTIMATE 6.0.

Se presentan a continuación los géneros reportados tanto de vertebrados como de artrópodos

1. Actitis
2. Agraulis
3. Alouatta
4. Ameiva
5. Anartia
6. Anas
7. Anolis
8. Aphrissa
9. Ara
10. Aramides
11. Aramus
12. Ardea
13. Ascia
14. Basiliscus
15. Biblis
16. Bothrops
17. Bubulcus
18. Burhinus
19. Buteo
20. Buteogallus
21. Butorides
22. Caiman
23. Cairina
24. Campephilus
25. Camponotus
26. Campylorhynchus
27. Canthon
28. Cantorchilus
29. Caracara
30. Carollia
31. Cathartes
32. Catharus
33. Cebus
34. Cephalotes
35. Cercomacra
36. Cerdocyon
37. Certhiaxis
38. Chloroceryle
39. Cissia
40. Claravis
41. Cnemidophorus
42. Coereba
43. Colaptes
44. Colinus
45. Columbina
46. Coprophanaeus
47. Coragyps
48. Crematogaster
49. Crotalus
50. Crotophaga
51. Cyanocorax
52. Danaus
53. Dasyprocta
54. Dasypus
55. Deltochilum
56. Dendrocygna
57. Dendropsophus
58. Desmodus
59. Dichotomius
60. Didelphis
61. Digitonthophagus
62. Dione
63. Dryadula
64. Dryas
65. Dryocopus
66. Ectatomma
67. Egretta
68. Eira
69. Elanus
70. Engystomops
71. Eudocimus
72. Eupsittula
73. Euptoieta
74. Eurysternus
75. Falco
76. Fluvicola
77. Forpus
78. Galbula
79. Galictis
80. Geranospiza
81. Glossophaga
82. Gonatodes
83. Hamadryas
84. Heliconius
85. Heraclydes
86. Herpailurus
87. Herpailurus
88. Herpetotheres
89. Himantopus
90. Hydrochaeris
91. Hypsiboas
92. Icterus
93. Iguana
94. Itaballia
95. Jacana
96. Junonia
97. Kinosternon
98. Kricogonia
99. Leiothlypis
100. Leopardus
101. Lepidoblepharis
102. Leptodactylus
103. Leptodeira
104. Leptotila
105. Lontra
106. Lophostoma
107. Lygophis
108. Mabuya
109. Machetornis
110. Malagoniella
111. Marmosa
112. Mazama
113. Megaceryle
114. Megascops
115. Melanerpes
116. Milvago
117. Momotus
118. Myiozetetes
119. Myrmeciza
120. Nemosia
121. Nyctibius
122. Nycticorax
123. Nyctidromus
124. Odontomachus
125. Onthophagus
126. Ortalis
127. Pachycondyla
128. Patagioenas
129. Pecari
130. Petrochelidon
131. Phaethornis
132. Phanaeus
133. Phimophis
134. Phimosus
135. Phoebis
136. Piaya
137. Pilherodius
138. Pitangus
139. Platalea
140. Pleurodema
141. Porphyrio
142. Procyon
143. Protonotaria
144. Psarocolius
145. Pseudoboa
146. Pseudomyrmex
147. Pseudopaludicola
148. Pteroglossus
149. Pyrisitia
150. Pyrrhogyra
151. Quiscalus
152. Rhinella
153. Rupornis
154. Sakesphorus
155. Saltator
156. Scarthyla
157. Sciurus
158. Setophaga
159. Sibon
160. Spiza
161. Sporophila
162. Stichelia
163. Sturnella
164. Sylvilagus
165. Synallaxis
166. Tamandua
167. Taygetis
168. Thamnodynastes
169. Thamnophilus
170. Thecadactylus
171. Thraupis
172. Tolmomyias
173. Trachemys
174. Tretioscincus
175. Tringa
176. Troglodytes
177. Turdus
178. Tyrannus
179. Uroxys
180. Vanellus
181. Volatinia
182. Xiphorhynchus
183. Zenaida

Se realizó el muestreo en el interior de la mina Calenturitas, ubicada en los municipios de Becerril, La Jagua de Ibirico y El Paso, departamento de Cesar