Registros biológicos de especies de fauna vertebrada terrestre en las centrales de San Carlos y Jaguas - 2007

Study Extent

CENTRAL JAGUAS La central Jaguas está localizadaentre los municipios de San Rafael, San Roque, Santo Domingo y Alejandría, con un área de 5.001,53 Ha distribuidas así: San Rafael 1.534,83 Ha, San Roque 566,83 Ha, Santo Domingo 373,97 Ha y Alejandría con 2.525,89 Ha. De acuerdo con el sistema de clasificación de Holdridge (1964), esta zona se localiza dentro de las zonas de vida o formaciones vegetales correspondientes a bosque muy húmedo premontano (bmh-PM). En general esta formación tiene como límites climáticos una biotemperatura media aproximada entre 18 y 24°C y un promedio anual de lluvia de 2.000 a 4.000 mm. El período de menos lluvias comprende los meses de diciembre, enero y febrero y los más lluviosos mayo y octubre. CENTRAL SAN CARLOS Localizada cerca del Municipio de San Carlos con un área de 2.977,67 Ha en éste y con 4.8 Ha en el Municipio de Puerto Nare. La zona de vida del área de estudio corresponde a bosque húmedo Tropical (bh-T), transición cálida al bosque muy húmedo premontano (bmh-PM), IGAC, 1977. Los límites climáticos que caracterizan al bh-T son una biotemperatura superior a 24 ºC, el promedio anual de lluvias varía entre 2.000 y 4.000 mm, ocupa una faja que va desde el nivel del mar hasta los 900 m aproximadamente. Los límites climáticos del bmh-PM son una biotemperatura media aproximada entre 18 y 24 ºC, un promedio anual de lluvias entre 2.000 y 4.000 mm y pertenece a la provincia de humedad perhúmedo; se localiza entre 900 y 2.000 m de altitud aproximadamente, con variaciones de acuerdo a las condiciones locales Las coberturas donde se desarrolló el monitoreo se caracterizan por ser matrices mixtas de bosque secundario (con especies de bosque maduro) y rastrojo alto con elementos sucesionales más avanzados que los bosques del área de influencia del embalse San Lorenzo. Esta composición se debe a la fragmentación del bosque como consecuencia de la tumba y quema para establecer potreros y/o cultivos, y a la extracción de especies maderables que se ha continuado haciendo en los últimos años. Debido a esto es difícil encontrar parches de coberturas boscosas con al menos 500 m continuos de bosque.

Sampling

HERPETOFAUNA Los datos se tomaron mediante registro visual a lo largo de transectos (Sutherland, 1996) de 50.0 m de largo por 2.0 m de ancho. Los transectos se ubicaron al azar, de tal forma que abarcaran áreas representativas del hábitat estudiado. Los recorridos fueron realizados por dos personas separadas entre sí a una distancia de 2.0 m durante la mañana, entre las 9:00 y 12:00 horas, y en las horas de la tarde entre 14:00 y las 17:00 horas, empleando más o menos una hora por transecto (dependiendo de las características bióticas de éstos), fotografía 1. El orden (día) del recorrido de los transectos también se sometió al azar, de esta manera se buscó disminuir los sesgos que suelen producirse por las variaciones climáticas de un día a otro. Además, se realizaron reconocimientos nocturnos para encontrar aquellas especies de hábitos nocturnos o crepusculares, imposibles de ver durante el día, para ello la metodología empleada fueron los registros visuales, al ser un poco más difícil la realización de transectos. MASTOFAUNA Captura de pequeños mamíferos no voladores Para la captura de pequeños mamíferos no voladores se utilizaron dos tipos de trampas, las trampas Sherman® (pequeñas, medianas y grandes), las cuales se instalaron en transectos no lineales de 300 m aproximadamente, intercalando un tipo de trampa con otro. No en todas los trabajos de campo se utilizaron los dos tipos de trampas o los diferentes tamaños de Sherman®. En cada sitio de muestreo se instalaron 12 trampas Sherman® (3 x 3.5 x 9") y 12 trampas Tomahawk todas a nivel del piso, éstas fueron revisadas diariamente a las 7:00 y recebadas a las 16:00 para minimizar la pérdida de cebos por hormigas y otros insectos. Para las Sherman®, se utilizaron dos tipos de cebos: a) mezcla de maní, avena, esencia de vainilla, ajonjolí y panela y b) banano, tratando de repartirlos tanto en las grandes como en las medianas. Para las Tomahawk se utilizó sardina enlatada. Los animales capturados se midieron y se identificaron en el campo por medio de claves taxonómicas, hasta el grado que éstas lo permitieron (género, especie), luego se liberaron previo marcaje con un corte del pelo para reconocer las recapturas y evitar el recuento de individuos. Captura de mamíferos voladores (Quirópteros) Para la captura de murciélagos se utilizaron dos redes de niebla tipo mist-nets, una de 12 m de largo y otra de 6 m, con 38 mm de ojo de malla, 50/2 de calibre, y 2.6 metros de ancho. Las redes se ubicaron teniendo en cuenta el borde del bosque, claros del bosque, corredores naturales, orillas de quebradas y plantas asociadas a los murciélagos. Éstas se abrieron de las 15:30 a las 21:00 horas, durante los periodos de mayor actividad para este grupo de mamíferos y fueron monitoreadas periódicamente según la actividad, no pasando de una hora entre revisión. Los murciélagos capturados se bajaron de la red y se depositaron en bolsas de tela Posteriormente se registraron los datos de localidad, fecha, hora de captura, sexo, medidas morfométricas según Emmons y Feer (1999) y todas las características externas necesarias para su correcta identificación. Muestreo de mamíferos grandes Colección de rastros y censos visuales: dado lo difícil en la captura de mamíferos grandes, para su registro se utilizó la colección de rastros como huellas, excrementos, dormideros o comederos y osamentas. Las huellas se fotografiaron para su posterior identificación. Para el conteo de los individuos sólo se contemplaron los rastros que aseguraran no pertenecían a un mismo individuo, para esto se tuvo en cuenta la distancia entre los rastros de una misma especie, además del tamaño de la huella. Las huellas con mejor definición fueron levantadas en parafina con el fin de preservarlas para colección y hacer posible otros estudios. Durante el día se realizaron recorridos por los lugares de muestreo con el fin de realizar observación directa de algunos mamíferos diurnos como primates, en adición, en las noches, alterno al muestreo de murciélagos también se realizaron censos visuales, ya que la mayoría de mamíferos son nocturnos. Métodos indirectos: en La Central Hidroeléctrica San Carlos se pudo recolectar dentro de las torres de captación las egagrópilas de la lechuza Tyto alba, las cuales son regurgitaciones de ésta, donde se encuentran gran cantidad de cráneos y huesos de mamíferos pequeños y voladores que permiten registrar especies de difícil captura o avistamiento. Una vez secas las egagrópilas, éstas se desbaratan en el laboratorio y los restos óseos que en ellas se encuentran se separan por morfología similar para su identificación. AVES La evaluación de la avifauna en las Centrales Hidroeléctricas Jaguas y San Carlos se realizó a través de caminatas de observación por transectos, en los cuales se efectuaron registros visuales y auditivos en los hábitats con fragmentos o parches de vegetación y en varios tipos de coberturas diferentes (bosques, rastrojos y áreas intervenidas) y con capturas de las diferentes especies de aves con la ayuda de redes de niebla. Muestreo por transectos: la observación de aves es uno de los métodos más aplicados para conocer la composición de las comunidades presentes en una determinada localidad. Este método es efectivo pues permite obtener listas de especies completas y representativas, y a su vez es altamente eficiente ya que maximiza la información obtenida por unidad de tiempo y esfuerzo. Para el registro de las especies se realizaron líneas rectas de 100 m de longitud que atraviesan los diferentes tipos de coberturas seleccionados. Se establecieron dos transectos diarios en un hábitat, para un total de una repetición. Los recorridos se hacen en silencio y en las horas de mayor actividad de las aves. El observador va caminando lentamente hasta un punto y se detiene, luego de tres minutos se anotan en una libreta todas las aves que se logran observar y escuchar durante cinco minutos. Se registran el nombre de la especie y el número de individuos reconocidos. Las observaciones de las especies se realizaron con la ayuda de binoculares con un poder de 8 x 42 mm. Cada transecto fue visitado ocho veces durante cada muestreo a la misma hora y con igual duración. Las observaciones se realizaron temprano en la mañana (entre las 6:00 a.m. y las 12:00 p.m.) y en la tarde (entre las 2:00 y las 6:00 p.m.) siempre y cuando las condiciones climáticas lo permitían. Se identificaron si las especies registradas son endémicas, migratorias o residentes y se hicieron observaciones sobre algunos comportamientos específicos, hábitos alimenticios y todos los indicios de nidificación de las especies en la zona. Muestreo con redes de niebla: para capturar las aves y estudiarlas en detalle, se utilizaron redes de niebla, las cuales son elaboradas con fibras muy delgadas y resistentes (nylon, poliéster o algodón). Por la finura de los hilos y su color (negras, grises, entre otros) estas redes pasan casi desapercibidas en el hábitat, por lo que logran atrapar con mucho éxito las aves que quedan enredadas al vuelo. Las redes de niebla han sido utilizadas para la recolección de datos en las aves y se han convertido en una herramienta efectiva para el inventario de las poblaciones estudiadas. Se emplearon tres redes durante toda la fase del inventario, dos de tipo ATX 12 y una ATX 6. Las medidas de las redes son de 12 m de largo por 2.6 m de ancho y de 6 m de largo por 2.6 m de ancho, con malla extendida de 30 a 36 mm. En total el área de cubrimiento fue de 30 m de largo por 2.6 m de ancho (78 m2). Las redes se ubicaron siempre en los mismos sitios y durante mínimo tres días consecutivos para cada sitio. Para el inventario se emplearon tres redes desplegadas simultáneamente durante mínimo ocho horas diarias cuando las condiciones climáticas lo permitían. Las redes se abrían entre las 6:00 y 6:30 horas hasta las 18:00 horas. El tiempo promedio entre la apertura de la primera y la última red se emplea como el tiempo de apertura. Las redes fueron revisadas constantemente, con una periodicidad entre 15 y 30 minutos y sin dejarlas abandonadas. Las aves que se capturaron fueron depositadas en bolsas de tela, para transportarlas posteriormente al lugar donde pudieron ser manipuladas con facilidad. Luego se tomaron una serie de medidas a cada uno de los individuos capturados, después de lo cual fueron liberados. Las especies fueron determinadas taxonómicamente y se les registraron las siguientes mediciones: peso, longitudes de culmen, pico, ala, ala extendida, cola, tarso y el estado reproductivo. Adicionalmente, se obtuvo el registro fotográfico de los primeros ejemplares de cada especie y sexo.

Method steps

1. Redes de niebla, transectos, trampas de cajón, censos visuales. Véase descripción del muestreo.

19 géneros de Anfibios: Bolitoglossa, Caecilia, Centrolene, Chaunus, Cochranella, Colostethus, Craugastor, Dendrobates, Dendropsophus, Eleutherodactylus, Engystomus, Hyloxalus, Hypsiboas, Leptodactylus, Lithobates, Relictivomer, Rhinella, Scinax, Smilisca. El 100% de los registros se encuentran identificados hasta especie.

1. Bolitoglossa
   rank: genus
2. Caecilia
   rank: genus
3. Centrolene
   rank: genus
4. Chaunus
   rank: genus
5. Cochranella
   rank: genus
6. Colostethus
   rank: genus
7. Craugastor
   rank: genus
8. Dendrobates
   rank: genus
9. Dendropsophus
   rank: genus
10. Eleutherodactylus
    rank: genus
11. Engystomus
    rank: genus
12. Hyloxalus
    rank: genus
13. Hypsiboas
    rank: genus
14. Leptodactylus
    rank: genus
15. Lithobates
    rank: genus
16. Relictivomer
    rank: genus
17. Rhinella
    rank: genus
18. Scinax
    rank: genus
19. Smilisca
    rank: genus

47 familias de Aves: Accipitridae, Alcedinidae, Anhingidae, Apodidae, Ardeidae, Bucconidae, Capitonidae, Caprimulgidae, Cathartidae, Charadriidae, Coerebidae, Columbidae, Corvidae, Cotingidae, Cracidae, Cuculidae, Dendrocolaptidae, Falconidae, Formicariidae, Fringillidae, Furnariidae, Galbulidae, Hirundinidae, Icteridae, Mimidae, Momotidae, Odonthophoridae, Pandionidae, Parulidae, Picidae, Pipridae, Psittacidae, Rallidae, Ramphastidae, Scolopacidae, Strigidae, Tersinidae, Thamnophilidae, Thraupidae, Tinamidae, Trochilidae, Troglodytidae, Trogonidae, Turdidae, Tyrannidae, Tytonidae, Vireonidae. El 100% de los registros se encuentran identificado hasta especie.

1. Accipitridae
   rank: family
2. Alcedinidae
   rank: family
3. Anhingidae
   rank: family
4. Apodidae
   rank: family
5. Ardeidae
   rank: family
6. Bucconidae
   rank: family
7. Capitonidae
   rank: family
8. Caprimulgidae
   rank: family
9. Cathartidae
   rank: family
10. Charadriidae
    rank: family
11. Coerebidae
    rank: family
12. Columbidae
    rank: family
13. Corvidae
    rank: family
14. Cotingidae
    rank: family
15. Cracidae
    rank: family
16. Cuculidae
    rank: family
17. Dendrocolaptidae
    rank: family
18. Falconidae
    rank: family
19. Formicariidae
    rank: family
20. Fringillidae
    rank: family
21. Furnariidae
    rank: family
22. Galbulidae
    rank: family
23. Hirundinidae
    rank: family
24. Icteridae
    rank: family
25. Mimidae
    rank: family
26. Momotidae
    rank: family
27. Odonthophoridae
    rank: family
28. Pandionidae
    rank: family
29. Parulidae
    rank: family
30. Picidae
    rank: family
31. Pipridae
    rank: family
32. Psittacidae
    rank: family
33. Rallidae
    rank: family
34. Ramphastidae
    rank: family
35. Scolopacidae
    rank: family
36. Strigidae
    rank: family
37. Tersinidae
    rank: family
38. Thamnophilidae
    rank: family
39. Thraupidae
    rank: family
40. Tinamidae
    rank: family
41. Trochilidae
    rank: family
42. Troglodytidae
    rank: family
43. Trogonidae
    rank: family
44. Turdidae
    rank: family
45. Tyrannidae
    rank: family
46. Tytonidae
    rank: family
47. Vireonidae
    rank: family

20 familias de Mamíferos: Aotidae, Canidae, Cebidae, Cricetidae, Cuniculidae, Dasypodidae, Dasyproctidae, Didelphidae, Echimydae, Emballonuridae, Felidae, Heteromydae, Megalonychidae, Molossidae, Mustelidae, Myrmecophagidae, Phyllostomidae, Procyonidae, Sciuridae, Vespertilionidae. El 93% de los registros se encuentran identificados hasta especie.

1. Aotidae
   rank: family
2. Canidae
   rank: family
3. Cebidae
   rank: family
4. Cricetidae
   rank: family
5. Cuniculidae
   rank: family
6. Dasypodidae
   rank: family
7. Dasyproctidae
   rank: family
8. Didelphidae
   rank: family
9. Echimydae
   rank: family
10. Emballonuridae
    rank: family
11. Felidae
    rank: family
12. Heteromydae
    rank: family
13. Megalonychidae
    rank: family
14. Molossidae
    rank: family
15. Mustelidae
    rank: family
16. Myrmecophagidae
    rank: family
17. Phyllostomidae
    rank: family
18. Procyonidae
    rank: family
19. Sciuridae
    rank: family
20. Vespertilionidae
    rank: family

33 Géneros de Reptiles: Ameiva, Amphisbaena, Anolis, Atractus, Basiliscus, Boa, Bothrops, Clelia, Cnemidophorus, Dendrophidium, Echinosauria, Gonatodes, Hemidactylus, Imantodes, Kinosternon, Lepidoblepharis, Leposoma, Leptodeira, Leptophys, Mabuya, Micrurus, Ninia, Norops, Oxybelis, Oxyrhopus, Polychrus, Porthidum, Pseustes, Rhadinaea, Spilotes, Stenorrhina, Tantilla, Thecadactylus. El 95% de los registros se encuentran identificados hasta especie.

1. Ameiva
   rank: genus
2. Amphisbaena
   rank: genus
3. Anolis
   rank: genus
4. Atractus
   rank: genus
5. Basiliscus
   rank: genus
6. Boa
   rank: genus
7. Bothrops
   rank: genus
8. Clelia
   rank: genus
9. Cnemidophorus
   rank: genus
10. Dendrophidium
    rank: genus
11. Echinosauria
    rank: genus
12. Gonatodes
    rank: genus
13. Hemidactylus
    rank: genus
14. Imantodes
    rank: genus
15. Kinosternon
    rank: genus
16. Lepidoblepharis
    rank: genus
17. Leposoma
    rank: genus
18. Leptodeira
    rank: genus
19. Leptophys
    rank: genus
20. Mabuya
    rank: genus
21. Micrurus
    rank: genus
22. Ninia
    rank: genus
23. Norops
    rank: genus
24. Oxybelis
    rank: genus
25. Oxyrhopus
    rank: genus
26. Polychrus
    rank: genus
27. Porthidum
    rank: genus
28. Pseustes
    rank: genus
29. Rhadinaea
    rank: genus
30. Spilotes
    rank: genus
31. Stenorrhina
    rank: genus
32. Tantilla
    rank: genus
33. Thecadactylus
    rank: genus

Departamento de Antioquia, municipio de San Carlos.