Caracterización de grupos hidrobiológicos en el arroyo Bruno, municipio de Albania, La Guajira

Study Extent

El área de estudio se encuentra en el departamento de la Guajira, municipio de Albania, el arroyo Bruno es un importante tributario directo del río Ranchería y está relacionado con las dinámicas de aguas subterráneas, transcurre entre bosques de galería. En la zona natural del arroyo Bruno el bosque alcanza entre 25 y 30 metros de altura y sus límites horizontales son variables y se integran paulatinamente con las coberturas vegetales aledañas.

Sampling

Los monitoreos hidrobiológicos se están realizando trimestralmente en ocho estaciones distribuidas en 3.6 km de longitud de desvío del arroyo Bruno, ubicado dentro del complejo minero Cerrejón en la jurisdicción del municipio de Albania, monitoreando ocho puntos en zonas naturales y zonas del nuevo cauce, tres puntos ubicados en el cauce natural, tres puntos sobre el nuevo cauce y dos puntos sobre el río Ranchería aguas arriba y abajo. Se realizaron tres réplicas por componente, a excepción de las macrófitas.

Method steps

1. Los métodos utilizados para limnología fueron: - Fitoplancton: Se colectaron muestras superficiales simples (100 L) en el centro, con ayuda de un balde y la red de fitoplancton (23 µm), para la identificación se siguieron las descripciones realizadas por Bourrelly (1972), Bicudo y Bicudo (1970), González (1988), Fanés (2008), Presscott (1970), Yacubson (1969), Yacubson (1974), Yacubson & Bravo (1982-1983), Ortega (1984) , Parra, Rivera, Gonzalez, Dellarossa, & Orellana (1982-1983). - Zooplancton: Se colectaron muestras superficiales simples (100 L) en el centro, con ayuda de un balde y la red de zooplancton (55 µm), la identificación se basó en la observación de estructuras externas, comparándolas con referencias taxonómicas de Paggi (1995), Gaviria S. (1988), Gaviria S. (1989), Gaviria S. (1993), Gaviria S. (1994), Gaviria S. (2000) y Koste (1978). Para fitoplancton y zooplancton se realizaron tres réplicas por punto, después de la colecta, se lavó la malla con el frasco lavador (agua destilada) para luego envasar el filtrado en los frascos ámbar de 135 mL. La identificación y conteo se realizó mediante el uso de un microscopio óptico utilizando aumentos entre 10 y 100X; el conteo se realizó sobre una cámara de Sedgewick – Rafter (APHA, 2012). - Perifiton: En cada punto de muestreo se ubicó un cuadrante de 3 cm2, donde se colectaron los objetos duros presentes (piedras, guijarros, etc.). Se tomaron tres réplicas de 99 cm2 (Rivera Rondon & Zapata Anzola, 2009). A estos se les realizó un raspado de la película, los cuales fueron guardados en frascos plásticos ámbar con solución Kew (agua destilada, alcohol y glicerina) (APHA-AWWA-WEF, 2012), para su posterior análisis en laboratorio. Se realizó la observación en barrido de placas Sedgewick-Rafter (SR), con la ayuda de un microscopio óptico. Se hizo la respectiva identificación hasta el nivel más bajo posible. Para la identificación se utilizaron los trabajos de Bicudo y Menezes (2006), Bicudo y Bicudo (1970), Parra, Rivera, Gonzalez, Dellarossa, & Orellana (1982-1983), Tell (1985), Whitford & Schumacher (1969). -Macroinvertrebrados bentónicos: Se utilizó una red Surber (250 µm ojo de malla/0.09 m2 de área) se ubicó en el lecho del sistema en contra de la corriente, luego con las manos se procedió a remover el sustrato haciendo que los organismos flotaran hacia la superficie y fueran arrastrados al interior de la red por efecto de la corriente, se depositaron los organismos en bolsas de cierre hermético (ziplock) para luego ser fijadas.
   Se tomaron muestras con una Draga tipo Petersen con área de 0,03m2, se hicieron tres lances hasta completar un área de 0.09 m2. Se lanzó la draga al agua, verificando que esta llevara la cubierta abierta al fondo, se realizó el lavado de las muestras haciéndolas pasar por tamices de 710 µm 500 µm y 250 µm, después del lavado de la totalidad de la muestra, se depositó en un recipiente plástico y se tiñó con solución Rosa de Bengala por una hora. Luego de pasado el tiempo la muestra fue depositada en una caja petri, y con la ayuda de pinzas entomológicas y aguja entomológica bajo el estereoscopio se separaron los organismos de los residuos en otra caja petri. La identificación de las taxas se realizó mediante la observación de estructuras morfológicas y aplicando las claves y referenciando los organismos en: Sarmiento y Ospina (2005), Alba-Tercedor (1996), Fernández y Domínguez (2001), Posada et al. (2000), McCaffrey (1981), Rupert y Barnes (1999), Roldán (1997), Bohórquez et al.(1998), Roldán y Ruiz (2001), Fernandez (2009), Springer, Hanson, y Ramirez (2010), Gutierrez y Dias (2015) McCaffrey (1981), Roldan Perez (1996). -Macrófitas: Se hicieron recorridos en los arroyos en forma de zigzag, de una orilla a otra, recogiendo las muestras y contabilizando las abundancias mediante el uso del marco de PVC de 0,25 m2 completando 10 m2. Las plantas se identificaron en campo mediante la utilización de claves e ilustraciones taxonómicas.
2. En el muestreo de peces se hizo uso de: -Dos atarrayas, la primera con área efectiva de pesca de aproximadamente 2,5 m de diámetro, construida con nylon multifilamento en tejido de 1 cm de ojo de malla y la segunda con un área de 3,5 m de diámetro construida en nylon multifilamento y un ojo de malla de 3,5 cm; una red de arrastre estilo trasmallo con dimensiones de 3 m x 1,3 m de altura y un ojo de malla de 1 cm en color negro. -Anzuelos pequeños con cordel en los sitios de mayor profundidad y zonas donde las atarrayas no lograron ser efectivas. -En lugares dominados por vegetación de borde o entre rocas de gran tamaño fueron utilizadas dos redes de mano (jamas), la primera en forma cuadrada con un área de apertura 30 cm, la segunda red de forma triangular y una área de apertura igual que la anterior para incrementar los datos de riqueza en todas las estaciones monitoreadas. Cada punto fue muestreado durante tres días seguidos con el objetivo de conocer de manera espacial y temporal la distribución de las comunidades ícticas presentes y sus posibles desplazamientos entre el cauce natural y el nuevo, al mismo tiempo identificar zonas dentro del nuevo cauce donde los servicios ecosistémicos naturales se repliquen en la mejor manera. Se estimó como esfuerzo de pesca 12 lances para cada atarraya y 10 arrastres con la red en cada punto. Las capturas con jamas dependieron de los sitios propicios para su utilización al igual que los anzuelos. Los peces capturados se mantuvieron vivos en un recipiente plástico con agua del medio hasta su posterior medición, esta se realizó con precisión de 1 mm y fueron pesados en una balanza electrónica con precisión de 0,1 gr para individuos pequeños y de 1 gr para individuos de biomasa superior a este límite de sensibilidad. Los individuos fueron devueltos vivos al sistema. Solo se sacrificaron los individuos escogidos para las disecciones con el objetivo de extraer sus estómagos y estructuras sexuales para análisis de laboratorio. Para la identificación se tomaron notas de las principales características merísticas, morfométricas y se tomaron fotografías, se usaron diversas listas, claves e iconografías especializadas como: (Eigenmann 1922), (Dahl 1971), (Maldonado-Ocampo et al., 2005), (Maldonado-Ocampo et al., 2008), entre otros. En el laboratorio para los diferentes estados de madurez sexual se realizaron observaciones macroscópicas y se analizó cada gónada teniendo en cuenta la escala de madurez de Vazzoler (1996), la cual contempla cuatro estados: inmaduro o virgen, en maduración, maduro y en regresión o reposo.

Este conjunto de datos comprende 15.589 registros biológicos. Se encuentran distribuidos en 6 reinos: Animalia (74.92%), Bacteria (3.47%), Chromista (12.77%), Fungi (0.01%), Plantae (4.21%), Protozoa (4.59%). Un 0.089% está clasificado a nivel de subespecie, un 59.18% a especie, 38.12% a género, 1.18% a familia y 1.43% a categorías superiores. El phylum Annelida se encuentra distribuida en 1 clase, 1 orden, 1 familia, 1 género. El 100% se encuentra clasificado hasta género.

1. Clitellata
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El phylum Arthropoda se encuentra distribuido en 7 clases, 17 ordenes, 49 familias, 70 géneros y 5 especies. El 0.85% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Arachnida
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2. Branchiopoda
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3. Hexanauplia
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4. Insecta
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5. Malacostraca
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6. Maxillopoda
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7. Ostracoda
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El phylum Chordata se encuentra distribuido en 1 clase, 9 ordenes, 25 familias, 42 género y 41 especies. El 92.90% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Actinopterygii
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El phylum Mollusca se encuentra distribuido en 1 clase, 4 ordenes, 7 familias, 8 géneros y 1 especie. El 5.55% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Gastropoda
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El phylum Rotifera se encuentra distribuido en 3 clases, 4 ordenes, 15 familias, 19 géneros, 21 especies y 3 subespecies. El 42.02% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Bdelloidea
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2. Eurotatoria
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3. Monogonta
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El phylum Amoebozoa se encuentra distribuido en 3 clases, 2 ordenes, 5 familias, 6 géneros y 16 especies. El 71.04% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Filosia
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2. Lobosa
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3. Tubulinea
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El phylum Bacillariophyta se encuentra distribuido en 2 clases, 9 ordenes, 13 familias, 16 géneros y 4 especies. El 16.46% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Bacillariophyceae
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2. Mediophyceae
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El phylum Charophyta se encuentra distribuido en 4 clases, 3 ordenes, 6 familias, 10 géneros y 3 especies. El 12.32% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Charophyceae
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2. Chlorophyceae
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3. Conjugatophyceae
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4. Zygnematophyceae
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El phylum Chlorophyta se encuentra distribuido en 3 clases, 6 ordenes, 7 familias, 12 géneros y 3 especies. El 10.90% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Chlorophyceae
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2. Ulvophyceae
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3. Maxillopoda
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El phylum Ciliophora se encuentra distribuido en 1 clase, 1 orden, 1 familia y 1 género. El 100% se encuentra clasificado hasta género.

1. Ciliatea
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El phylum Cyanobacteria se encuentra distribuido en 2 clases, 7 ordenes, 13 familias y 14 géneros. El 100% se encuentra clasificado hasta género.

1. Cyanobacteriia
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2. Cyanophyceae
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El phylum Euglenophyta se encuentra distribuido en 1 clase, 1 orden, 4 familias, 5 géneros y 3 especies. El 11.32% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Euglenophyceae
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El phylum Euglenozoa se encuentra distribuido en 5 clases, 4 ordenes, 6 familias, 8 géneros y 4 especies. El 18.58% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Euglenoidea
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2. Euglenophyceae
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3. Filosia
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4. Tubulinea
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5. Conjugatophyceae
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El phylum Ochrophyta se encuentra distribuido en 5 clases, 17 ordenes, 21 familias, 23 géneros y 6 especies. El 8.64% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Bacillariophyceae
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2. Coscinodiscophyceae
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3. Mediophyceae
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4. Monogonta
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5. Maxillopoda
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El phylum Tracheophyta se encuentra distribuido en 2 clases, 4 ordenes, 5 familias, 5 géneros y 3 especies. El 42.85% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Liliopsida
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2. Magnoliopsida
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El phylum Cercozoa se encuentra distribuido en 1 clase, 1 orden, 1 familia, 1 género y 1 especie. El 100% se encuentra clasificado hasta especie.

1. Tubulinea
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El phylum Ascomycota se encuentra distribuido en 1 clase, 1 orden, 1 familia y 1 género. El 100% se encuentra clasificado hasta género.

1. Dothideomycetes
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El phylum Cyanophyta se encuentra distribuido en 1 clase, 1 orden, 1 familia y 1 género. El 100% se encuentra clasificado hasta género.

1. Cyanophyceae
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El Arroyo Bruno se encuentra localizado entre los límites municipales de Albania y Maicao al sur del departamento de la Guajira, tiene su nacimiento a 420 metros de altitud aproximadamente, dentro de la reserva natural de los Montes de Oca, este recibe las aguas de los arroyos Aritaymahana en su parte alta y Tamborana en su parte media. Es un importante tributario directo del río Ranchería y está relacionado con las dinámicas de aguas subterráneas, transcurre entre bosques de galería. En la zona natural del arroyo Bruno el bosque alcanza entre 25 y 30 metros de altura y sus límites horizontales son variables y se integran paulatinamente con las coberturas vegetales aledañas.