Monitoreo del Ictioplancton y potenciales Áreas de Desove en el marco del Proyecto Hidroeléctrico Ituango

Study Extent

Sampling

Quality Control

Method steps

1. Trabajo de campo En campo, las muestras fueron tomadas con la ayuda de una red cónico-cilíndrica de 1,5 m de longitud, 35 cm de abertura de boca y con un poro de malla de 400 µm; en cada red se instaló un flujómetro para estimar el caudal filtrado. Con la red se filtró a contraflujo durante cinco minutos en cada estación. Las muestras colectadas fueron preservadas con alcohol al 96% en recipientes plásticos de 500 ml, los cuales fueron marcados con la información de fecha y sitio de filtración.
2. Trabajo en laboratorio En el laboratorio, las muestras se lavaron en tamices de diferente poro y el ictioplancton se separó del material acompañante, y se agrupó según su periodo y fases de desarrollo (huevo, embrión, larva). Para su identificación se empleó un estereoscopio con aumento de 0,65X a 4X.
3. Las larvas fueron agrupadas según el grado de desarrollo de acuerdo a los criterios de Kendall y col. (1984c) y de Nakatani y col. (2001), en las fases de: • Larval vitelino: comprende desde la eclosión hasta el inicio de la alimentación exógena (boca y ano abiertos, ojo totalmente formado y pigmentado), • Pre-flexión: desde el inicio de la alimentación exógena y la flexión de la notocorda, seguido de la formación de los elementos de soporte de la aleta caudal, • Flexión: desde la flexión de la notocorda, seguido de la formación de los elementos de soporte de la aleta caudal hasta la flexión completa y la aparición del botón de la aleta pélvica y el comienzo de la segmentación de los radios de las aletas dorsal y anal, • Post-flexión: desde la flexión completa de la notocorda, la aparición del botón de la aleta pélvica y el comienzo de la segmentación de los radios de las aletas dorsal y anal, hasta la formación completa de los radios de la aleta pectoral, la absorción de la aleta primordial o embrionaria y la aparición de las escamas. Para identificar el taxón de las larvas se utilizó la clave de Jiménez-Segura (2007) sobre especies y formas de ictioplancton en el periodo larval.
4. Análisis de información Para estimar la densidad de individuos se utilizó la siguiente expresión: Y = (X/V). Donde: Y = densidad de huevos y larvas/ m3 X= número de huevos y larvas capturados V = volumen de agua filtrada (m3)
5. Con base en el estimativo de la densidad (individuos por m3), de acuerdo con la fecha de muestreo, se identificaron los periodos de mayor intensidad reproductiva (elevación en la densidad) durante la secuencia temporal observada. Adicionalmente, se identifican los sitios con mayores densidades de ictioplancton y se correlacionan con la información obtenida de los muestreos de fauna íctica en el área.
6. A partir del tiempo que toma un individuo (horas) en alcanzar el periodo larval (fase pre-flexión y flexión) luego de la fertilización y teniendo en cuenta la velocidad promedio del río (m/s), se estimó la distancia que han recorrido los individuos desde la fertilización hasta su captura en cada uno de los sitios de muestreo. En el caso de las formas de carácidos, se utilizó el tiempo promedio de desarrollo de las especies de Characiformes de las que se tiene información. Con base en este cálculo se localizaron las posibles áreas de desove de los individuos colectados.

1. Characiformes
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2. Siluriformes
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3. Coleoptera
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4. Perciformes
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5. Gymnotiformes
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6. Hemiptera
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7. Diptera
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8. Odonata
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9. Cyprinodontiformes
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10. Acanthuriformes
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11. Trichoptera
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12. Myliobatiformes
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13. Ephemeroptera
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14. Lepidoptera
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15. Architaenioglossa
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16. Clupeiformes
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