Caracterización de fauna y flora de Puerto Bolívar, municipio de Uribia, La Guajira
Citation
Dávila Reyes D, Franco León N, Suárez Avellaneda J D, Gantiva Quintero C, Carpera Moreno V H, Cañon Escobar S, Tejeiro L N (2022). Caracterización de fauna y flora de Puerto Bolívar, municipio de Uribia, La Guajira. Version 1.1. Carbones del Cerrejón Limited. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/lxrcg0 accessed via GBIF.org on 2024-12-14.Description
La empresa Carbones del Cerrejón Limited en el año 2020 empieza a implementar el primer monitoreo trienal de los componentes de fauna terrestre (reptiles, anfibios, insectos, aves y mamíferos) y flora de la estación de monitoreo en Puerto Bolívar – Cerrejón, con el fin de evaluar las condiciones ecosistémicas actuales y generar la línea base para futuras comparaciones, que permitan determinar el estado de conservación de los diferentes componentes, de forma que sea una herramienta para direccionar las acciones de manejo por parte de Cerrejón. El monitoreo se llevó a cabo entre el 30 de octubre y 15 de noviembre del año 2020 para la temporada de lluvias y entre el 21 de julio y 30 de julio del año 2021 para la temporada seca en la estación de Puerto Bolívar, en el área ubicada en la alta Guajira, en la bahía de Media Luna, a la entrada de Bahía Portete, en el municipio de Uribia.
Este conjunto de datos comprende 926 registros biológicos, pertenecientes a los reinos Animalia (78.61%) y Plantae (21.38%). Un 97.19% está determinado a nivel de especie y un 2.8% a nivel de género.
Sampling Description
Study Extent
La caracterización efectuada se evaluó en la estación de muestreo (12° 13' 57.8" N, 71° 58' 20.3" W) Puerto Bolívar- Cerrejón para la temporada de lluvias del 2020 (octubre - nomviembre) y temporada seca 2021 (julio). Esta se encuentra ubicada en las inmediaciones de la Bahía Portete, en el municipio de Uribia. Este sector hace parte de la región Alta Guajira y presenta formaciones vegetales de tipo maleza desértica tropical y monte espinoso tropical (Torres et al., 2009). En esta área se realizaron los estudios relacionados a entomología, herpetología, avifauna y botánica. Adicionalmente, el área de monitoreo de la mastofauna consistió en un polígono con un área aproximada de 0.38 km^2 con coordenadas de punto medio 12° 14.009' N, 71° 58.351' W. Por último, el estudio de flora reportó dos coordenadas dentro de la estación, las cuales corresponden a dos parcelas.Sampling
La caracterización de fauna y flora en Puerto Bolívar esta representada por dos monitoreos realizados en el mes de octubre y noviembre del 2020 y en el mes de Julio de 2021 en una misma estación de muestreo. La metodología se dividió en cinco componentes: entomofauna, mastofauna, herpetofauna, avifauna y flora.Method steps
- ENTOMOFAUNA - Hormigas: La metodología de muestreo consistió en la captura manual haciendo búsqueda activa en depósitos de detritus, vegetación y troncos en descomposición a lo largo de un polígono establecido cerca del ferrocarril de transporte. Además, se instalaron seis trampas de caída sin cebo en la región del polígono estudiado. - Escarabajos coprófagos: La metodología utilizada consistió en el uso de seis trampas caídas de Pitfall distribuidas en un transecto lineal, separadas a 30 metros entre sí. El diseño de las trampas presentó un recipiente grande o mediano enterrado al ras de suelo, agua y detergente como liquido y cebo con excremento humano para una mayor atracción de los organismos de interés. Una vez se obtuvieron las muestras, se procedió a recolectarlas en frascos de alcohol para su posterior identificación. - Mariposas: Se realizaron transectos lineales de longitud de 150 metros con un total de seis trampas Van Someren Rydon (TVSR) en el sitio de muestreo, cada una ubicada a 30 metros entre sí y a una altura aproximada del dosel del bosque. Las trampas utilizaron como cebo fruta en descomposición para atraer a los organismos de interés y se revisaron cumplidas 24 horas. Los organismos se recolectaron en sobres de papel y se almacenaron en contenedores con sílica gel para su transporte y posterior identificación. También, se realizaron recorridos de búsqueda con red entomológica para una mayor captación de individuos, que no pueden ser identificados en campo.
- MASTOFAUNA - Recorridos libres y rastreos: Los recorridos tuvieron espacio en dos jornadas, una diurna de 05:30 hasta las 09:30 horas y una nocturna de 16:00 hasta las 20:00 horas. La técnica implementada consistió en recorridos libres a pie realizando una búsqueda intensa de individuos y rastros de mamíferos (huellas, heces, sendas, pelos, rasguños o cualquier indicio). Todos los rastros fueron registrados fotográficamente con una referencia de tamaño. Una vez se realizó el muestreo se procedió a la identificación de los individuos utilizando claves y bibliografía especializada (Aranda, 2000; Chame, 2003; Defler, 2003; Morales et al., 2004; Solari et al., 2013; Tirira, 2007). - Fototrampeo: Se instalaron cuatro cámaras trampas en la estación de muestro, las cuales permanecieron activas durante ocho días. A través de estas se obtuvieron registros de los individuos mediante la foto identificación, que siguió la orientación taxonómica de Emmons & Feer, 1997, y Wilson & Reeder, 2005. - Redes de niebla: La metodología consistió en la instalación de cuatros redes de niebla de 12 metros de largo por 3 metros de alto, durante dos noches y una madrugada, la redes se abrieron entre las 17:30 y 21:30 horas, mientras que en la madrugada desde las 4:00 horas hasta la salida del sol. A los organismos capturados se les tomaron medidas morfométricas y se realizó un registro fotográfico. A continuación, se realizó la identificación taxonómica utilizando las claves especializadas (Albuja, 1999; Linares, 1998; Muñoz, 2001; Tirira, 2008). De forma complementaria se realizaron grabaciones ultrasónicas con el uso de micrófono Echo Meter Touch 2 PRO y aplicación Echo Meter Touch Bat Detector, recorder & Analyzer, por una hora en cada jornada para la identificación de nuevos individuos.
- HERPETOFAUNA: - Encuentro visual con tiempo determinado: La metodología consistió en recorrer de manera aleatoria el área en un tiempo determinado, buscando activamente anfibios y reptiles en todos los microhábitats. Se realizaron recorridos en la mañana que empezaron a las 8:00 aproximadamente y finalizaron a las 11:30 horas, y los recorridos nocturnos se realizaron entre las 14:30 y 21:00 horas. El esfuerzo de muestreo efectivo fue de siete horas/ hombre por día. La identificación taxonómica se realizó a través de observación directa y registros fotográficos de las diferentes especies.
- AVIFAUNA: - Transectos y recorridos libres: Se estableció un transecto fijo de 900 metros dividido en tres puntos (300 cm c/u). Luego se realizaron recorridos libres en la mañana, tarde y otro en un área que no había sido explorada en monitoreos diferentes. El muestreo se realizó durante las horas pico de las aves (05:00-10:00 y 16:00-18:00 horas) (Ralph et al., 1996). Para cada registro se describe si fue una percepción visual o auditiva, además se evitó el reconteo de individuos durante la misma jornada y se garantizó la independencia de las detecciones de aves. También, se realizaron observaciones incidentales que no fueron incluidas únicamente en el listado final de las especies. Por último, el registro de grabación de los cantos se realizó mediante grabadores de sonidos con micrófonos integrados TacamDR-40. La determinación taxonómica se realizó en campo consultando bibliografía especializada (Avendaño et al., 2017; Ayerbe-Quiñones, 2018). - Redes de niebla: La metodología consistió en el establecimiento de ocho redes de niebla de 12 metros de largo por 2.6 metros de ancho con ojo de malla extendida de 30 mm. Las redes fueron instaladas en tándem en un corredor observado previamente (Ralph et al., 1996). Una vez se obtuvo el muestreo se tomaron datos morfológicos y fisiológicos de las aves capturadas, se anillaron o marcaron algunas especies cumpliendo con el manual de métodos de Villarreal et al., (2004). La determinación taxonómica se realizó en campo consultando bibliografía especializada (Avendaño et al., 2017; Ayerbe-Quiñones, 2018). Adicionalmente, se registraron los cantos y se corroboraron con la plataforma Xeno-Canto y la compilación de canto de aves de Colombia de Peter Boesman.
- FLORA: La estructura y composición florística de la vegetación presente en el monitoreo de Puerto Bolívar consistió en el establecimiento de parcelas de muestreo rápido (RAP). El área de muestreo fue de 0.2 ha previamente subdivididas en dos parcelas de 50 m x 4 m cada una. Además, cada parcela fue dividida en dos secciones de 10 m^2 registrando individuos únicamente con DAP mayor o igual a 10 cm y en la otra sección especies latizales (entre 10-30 cm de DAP) y brinzales (menores de 10 cm). Las lianas y herbáceas se registraron mediante presencia y ausencia, sin discriminar el DAP o altura. En adición, se registró para cada individuo sus hábitos de crecimiento, altura, diámetro del tallo a la altura del pecho (DAP), cobertura o radio de la copa, información botánica in situ de característica necesarias para la determinación de la especie. La identificación taxonómica se realizó directamente en campo con claves taxonómicas, guías y catálogos ilustrados (Flora Colombiana y Flora Neotropical). Por último, para las especies no identificadas se les tomó muestras y se utilizó The Plant List para corroborar su taxonomía.
Taxonomic Coverages
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Formicidaerank: family
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Hesperiidaerank: family
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Lycaenidaerank: family
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Nymphalidaerank: family
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Pieridaerank: family
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Riodinidaerank: family
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Accipitridaerank: family
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Boidaerank: family
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Bucconidaerank: family
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Bufonidaerank: family
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Canidaerank: family
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Cardinalidaerank: family
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Cathartidaerank: family
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Colubridaerank: family
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Columbidaerank: family
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Cuculidaerank: family
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Dactyloidaerank: family
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Didelphidaerank: family
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Falconidaerank: family
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Icteridaerank: family
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Iguanidaerank: family
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Leporidaerank: family
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Leptodactylidaerank: family
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Mimidaerank: family
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Parulidaerank: family
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Phyllodactylidaerank: family
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Phyllostomidaerank: family
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Picidaerank: family
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Polioptilidaerank: family
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Sphaerodactylidaerank: family
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Teiidaerank: family
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Thamnophilidaerank: family
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Thraupidaerank: family
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Trochilidaerank: family
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Troglodytidaerank: family
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Tyrannidaerank: family
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Amaranthaceaerank: family
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Apocynaceaerank: family
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Boraginaceaerank: family
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Cactaceaerank: family
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Capparaceaerank: family
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Convolvulaceaerank: family
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Euphorbiaceaerank: family
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Leguminosaerank: family
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Malvaceaerank: family
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Meliaceaerank: family
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Nyctaginaceaerank: family
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Passifloraceaerank: family
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Poaceaerank: family
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Sapindaceaerank: family
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Simaroubaceaerank: family
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Solanaceaerank: family
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Verbenaceaerank: family
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Vitaceaerank: family
Geographic Coverages
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