Análisis de Integridad Biológica en la Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco. Convenio CVC- Univalle 108 de 2017

Study Extent

La cuenca alta del río Bitaco se encuentra ubicada en el municipio de La Cumbre, en las veredas Chicoral y Zaragoza de la parte media -alta de la Subcuenca del río Bitaco. Al norte limita con la cabecera municipal, al sur con el municipio de Dagua, al oriente con el municipio de Yumbo y al occidente con el corregimiento de Lomitas. Según el sistema actualizado de clasificación de biomas y ecosistemas, diseñado por la CVC y FAUNAGUA (2009), en el área se encuentran dos tipos de ecosistemas: Bosque medio húmedo en montaña fluvio gravitacional (BOMHUMH) y Bosque frío húmedo en montaña fluvio-gravitacional (BOFHUMH).

Sampling

En la zona de estudio identificaron tres tipos de hábitat contrastantes: los bosques de la RFPR Bitaco (BR), los bosques secundarios (BS) y la zona productiva de cultivos de té (TÉ). 1.La RFPR Bitaco tiene una extensión de 194,3 ha donde predominan los bosques maduros intervenidos y los bosques sucesionales. En este estudio se trabajó la zona más conservada de la Reserva (Bosques maduros intervenidos) localizados en las zonas altas y en quebradas con altas pendientes, abarcando cerca de 181,9 ha. 2.Los bosques secundarios (BS) abarca cerca de 36,8 ha, donde se pueden diferenciar dos subzonas. El área alta la cual colinda con la RFPR Bitaco se caracteriza por presentar pendientes moderadas. En la composición vegetal predominan árboles entre 10 y 20 metros de altura, de similiar composición vegetal a la Reserva, el dosel tiene algunos claros, el sotobosque y el estrato bajo son discontinuos. 3. Zona productiva de cultivos de té (TÉ) comprende 50,7 ha, en un rango altitudinal entre 1.860 y 2.031 m s.n.m. En algunas zonas o lotes, las plantas de Té no han sido podadas generando una matriz muy tupida y un microambiente mucho más húmedo comparado con las zonas podadas las cuales presentan menor humedad ANFIBIOS Y REPTILES Fase de campo: para la colecta de la herpetofauna en cada uno de los sitios de muestreo, se utilizó el método de transectas de banda estrecha, través de trayectos previamente establecidos de 80 m de longitud por 4 m de ancho. Los muestreos se llevaron a cabo en la mañana entre las 09:00-13:00 y en las horas de la noche entre las 19:00-23:00 horas. Para cada uno de los individuos colectados se llenó una ficha de campo en el que se registró información concerniente a la hora de captura así como datos ecológicos del sitio de encuentro para cada individuo AVES La técnica de muestreo empleada para este grupo biológico fue la observación directa o captura visual y la captura pasiva. • Captura visual u observación directa: se recorrieron senderos, bosques naturales y plantaciones. Se siguió la metodología de conteo por puntos de amplitud variable, la cual consiste en caminar lentamente y detenerse registrando los individuos visuales o auditivamente en cada punto esperando 10 minutos. Se seleccionaron 5 puntos en total, cada punto se ubicó cada 200 m para cubrir una longitud de 1 km para cada hábitat. Las actividades comportamentales como alimentación, percha, uso del hábitat (arborícola, arbustivo, terrestre, etc.) y tipo de alimento que consumen (insectos, vertebrados, frutos entre otros), fueron registradas. Los censos visuales se ejecutaron en las horas de la mañana entre las 06:00 y las 10:00 horas, y en la tarde entre las 16:00 y las 18:00 horas. • Captura pasiva: Se utilizaron en total seis redes de niebla con extensión de 12 x 2.5 m, con un ojo de malla de 16 mm y se ubicaron durante cuatro días en cada hábitat, sin embargo fueron reubicadas una vez dentro del mismo hábitat después de dos días con el fin de abarcar más área de estudio. Se realizaron revisiones cada hora con algunas excepciones media hora por la brizna, brisa de la niebla y el frío. Las redes operaron entre 6- 10 h y 14- 18h MAMÍFEROS VOLADORES Se utilizaron diez redes de niebla de 12 m de longitud, las cuales operaron entre las 18:00 y 22:00 horas abarcando el primer pico de actividad de los quirópteros. Las redes eran revisadas casa hora y se ubicaron en posibles sitios de paso para los murciélagos, como en senderos, bordes y claros de bosque. De cada individuo capturado se registró especie, sexo y edad, y posteriormente los individuos fueron liberados. El listado taxonómico de especies se realizó siguiendo la propuesta de Gardner 2007, con los ajustes realizados por Ramírez-Chaves et al. 2016 para los mamíferos de Colombia MAMÍFEROS TERRESTRES En cada cobertura fueron empleadas un total de 70 trampas (60 Sherman y 10 National) ubicadas a lo largo de transectos y espaciadas aproximadamente cada 10 metros (Figura 8A y B). La cantidad de transectos por zonas fue diferente ajustándose al relieve del sitio de trabajado, y la accesibilidad del mismo. Se utilizaron dos tipos de cebo: 1) maíz trillado con sardina en salsa de tomate y 2) avena con esencia de vainilla, maduro y papaya Adicionalmente, se instaló de manera simultánea una cámara trampa en cada zona de muestreo, la cual operó durante 7 días efectivos (Figura 8.D). Cada uno de los individuos capturados fue identificado a la menor categoría posible, fotografiado y se registraron datos de: sexo, peso y medidas morfológicas (longitud total, longitud pata, longitud oreja, longitud cola, etc.); posteriormente los individuos fueron liberados. PLANTAS Se caracterizó la flora vascular de cada cobertura vegetal o ecosistema escogido en el área protegida, en términos de la composición y estructura de la vegetación de cada sitio muestreado y el potencial de regeneración. Para la medición de la estructura de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema de la reserva, se siguió la metodología de cinturón de Gentry (1982). En cada cobertura se realizaron transectos lineales de 50 m de largo por 2 m de ancho para un área total muestreada por transecto de 100 m2. Para ello se usó una cuerda de 50 m seccionada cada 10 m, y se proyectó 1 m a cada lado de ésta con una vara. Se registró el CAP (circunferencia a la altura del pecho) y la altura total de los rametos de los individuos leñosos (i.e. árbol, arbusto y liana) que presentaron un DAP (diámetro a la altura del pecho) ≥ 2,5 m medido a 1,3 m de altura desde el suelo, y el hábito de crecimiento. El CAP se tomó con una cinta métrica y la altura se estimó a ojo. Para la medición del potencial de regeneración de la flora leñosa de cada cobertura vegetal o ecosistema, se realizaron cuatro (4) parcelas de 1 m2 en el área adyacente a cada transecto trazado en la medición de la estructura vegetal. Cada parcela se ubicó con una distancia entre ellas de 10 m, con lo cual la primera parcela estuvo en los primeros 10 m del transecto, la segunda a los 20 m, la tercera a los 30 m y la última a los 40 m. Se registraron las plántulas y juveniles

Method steps

1. La matriz de priorización y evaluación de la integridad biológica de los hábitats evaluados en la Reserva Forestal Protectora de Bitaco, ubicada en la cuenca del río Bitaco, estima y discrimina las diferentes variables de estado identificadas como indicadoras “biológicas” en los usos de tierra que conforman la línea de base. Está conformada por una matriz de análisis multinivel, en la que se registra a través de una jerarquía secuencial de mayor a menor, las variables de estado más significativas “niveles”; y que además condicionan el tipo, la riqueza, la distribución, la vulnerabilidad, las exigencias ecológicas y la abundancia de los indicadores determinados en los sistemas de estudio Esta matriz posee una sección de “entrada” que está constituida por los datos obtenidos en campo y analizados de cada uno de los grupos seleccionados como indicadores biológicos, según el protocolo de monitoreo propuesto. De igual forma posee una sección de salida, conformada por la valoración numérica de los indicadores evaluados para cada uno de los hábitats o sistemas analizados. Los niveles de análisis y valoración de los indicadores biológicos evaluados en las diferentes unidades de paisaje, han sido escogidos y jerarquizados en una matriz de importancia teniendo en cuenta información primaria y secundaria.
   Los datos ingresados en la matriz son producto de analizar la información generada en campo por cada grupo bioindicador evaluado y sobre cada una de las variables de estado que contempla. Desde el inicio y a medida que se avanza sobre esta, cada uno de los niveles o variables de estado confronta la información obtenida con las distintas categorías que para cada grupo bioindicador se ha asumido como discriminantes y puntúa un valor de referencia para dicho carácter sobre el nivel especifico.

Se trabajaron los grupos biológicos: anfibios, reptiles, aves, mamíferos y plantas

1. Acmella ciliata (Kunth) Cass.
2. Adelomyia melanogenys (Fraser, 1840)
3. Aegiphila alba Moldenke
4. Ageratum
5. Aglaiocercus kingi (Hartert, 1898)
6. Akodon affinis (J.A. Allen, 1912)
7. Alchornea acutifolia Müll. Arg.
8. Alchornea grandiflora Müll. Arg.
9. Alchornea latifolia Sw.
10. Allophylus excelsus (Triana & Planch.) Radlk.
11. Alsophila erinacea (H. Karst.) D.S. Conant
12. Amazilia franciae (Bourcier & Mulsant, 1846)
13. Anabacerthia variegaticeps (Sclater, 1857)
14. Aniba perutilis Hemsl.
15. Anisognathus somptuosus (Lesson, 1831)
16. Annona cherimolioides Triana & Planch.
17. Anolis antonii Boulenger, 1908
18. Anolis eulaemus Boulenger, 1908
19. Anolis ventrimaculatus Boulenger, 1911
20. Anoura cultrata Handley, 1960
21. Anthurium giraldoi Croat
22. Aotus zonalis Goldman, 1914
23. Ardisia guianensis (Aubl.) Mez
24. Arenaria lanuginosa (Michx.) Rohrb.
25. Arremon brunneinucha (Lafresnaye, 1839)
26. Asplenium
27. Atlapetes albinucha (Lafresnaye & D'Orbigny, 1838)
28. Aulacorhynchus haematopygus (Gould, 1835)
29. Basileuterus culicivorus (Deppe, 1830)
30. Basileuterus tristriatus (von Tschudi, 1844)
31. Bassaricyon gabbii J.A. Allen, 1876
32. Bassaricyon medius Thomas, 1909
33. Begonia
34. Beilschmiedia alloiophylla (Rusby) Kosterm.
35. Bidens pilosa L.
36. Billia rosea (Planch. & Linden) C. Ulloa & P. Jørg.
37. Blakea subconnata O. Berg ex Triana
38. Blechnum lehmannii Hieron.
39. Brosimum utile (Kunth) Oken
40. Browallia americana L.
41. Bunchosia
42. Buteo platypterus (Vieillot, 1823)
43. Buthraupis montana (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837)
44. Calliandra trinervia Benth.
45. Calliphlox mitchellii (Bourcier, 1847)
46. Camellia sinensis (L.) Kuntze
47. Capsicum geminifolium (Damm.) Hunz.
48. Cardellina canadensis (Linnaeus, 1766)
49. Carollia brevicauda (Schinz, 1821)
50. Casearia arborea (Rich.) Urb.
51. Casearia megacarpa Cuatrec.
52. Casearia sylvestris Sw.
53. Castilleja arvensis Schltdl. & Cham.
54. Catharus ustulatus (Nuttall, 1840)
55. Cecropia obtusifolia Bertol.
56. Cecropia telealba Cuatrec.
57. Centrolene savagei (Ruíz-Carranza & Lynch, 1991)
58. Cerdocyon thous (Linnaeus, 1766)
59. Chamaedorea pinnatifrons (Jacq.) Oerst.
60. Chamaepetes goudotii (Lesson, 1828)
61. Chaptalia nutans (L.) Pol.
62. Chloris ciliata Sw.
63. Chlorochrysa nitidissima Sclater, 1873
64. Chlorophanes spiza (Linnaeus, 1758)
65. Chloropipo flavicapilla (P.L. Sclater, 1852)
66. Chlorospatha
67. Chlorospatha tokioensis Croat & L.P. Hannon
68. Chlorospingus canigularis (Lafresnaye, 1848)
69. Chlorospingus semifuscus Sclater & Salvin, 1873
70. Chlorostilbon melanorhynchus Gould, 1860
71. Chrysochlamys colombiana (Cuatrec.) Cuatrec.
72. Chrysochlamys dependens Planch. & Triana
73. Chusquea
74. Cinnamomum triplinerve (Ruiz & Pav.) Kosterm.
75. Clavija cauliflora Regel
76. Clidemia
77. Coeligena coeligena (Lesson, 1833)
78. Coereba flaveola (Linnaeus, 1758)
79. Colibri thalassinus (Swainson, 1827)
80. Commelina diffusa Burm. f.
81. Condaminea corymbosa (Ruiz & Pav.) DC.
82. Contopus virens (Linnaeus, 1766)
83. Cranioleuca erythrops (Sclater, 1860)
84. Cremastosperma awaense Pirie
85. Cremosperma hirsutissimum Benth.
86. Creurgops verticalis Sclater, 1858
87. Cricetidae
88. Critoniopsis occidentalis (Cuatrec.) H. Rob.
89. Crotophaga ani Linnaeus, 1758
90. Cryptopipo holochlora (Sclater, 1888)
91. Crypturellus soui (Hermann, 1783)
92. Cupania livida (Radlk.) Croat
93. Cuphea racemosa (L.f.) Spreng.
94. Cyathea andina (H. Karst.) Domin
95. Cyathea caracasana (Klotzsch) Domin
96. Cybianthus occigranatensis (Cuatrec.) G. Agostini
97. Cybianthus verticilloides (Cuatrec.) G. Agostini
98. Cyclarhis nigrirostris Lafresnaye, 1842
99. Cyperus
100. Cyphorhinus thoracicus Tschudi, 1844
101. Dendropsophus columbianus (Boettger, 1892)
102. Dermanura
103. Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758
104. Diglossa caerulescens Sclater, 1856
105. Diglossa sittoides (D'Orbigny & Lafresnaye, 1838)
106. Doryfera ludovicae (Bourcier & Mulsant, 1847)
107. Dracula chimaera (Rchb. f.) Luer
108. Drymaria ovata Humb. & Bonpl. ex Schult.
109. Dussia lehmannii Harms
110. Dysithamnus mentalis (Temminck, 1823)
111. Elaeagia pastoensis L.E. Mora
112. Eleutheranthera tenella (Kunth) H. Rob.
113. Emilia coccinea (Sims) G. Don
114. Emilia fosbergii Nicolson
115. Empidonax virescens (Vieillot, 1818)
116. Endlicheria rubriflora Mez
117. Eragrostis
118. Eschweilera
119. Eschweilera antioquensis Dugand & Daniel
120. Eschweilera bogotensis R. Knuth
121. Eubucco bourcierii (Lafresnaye, 1845)
122. Eugenia
123. Euphonia cyanocephala (Vieillot, 1818)
124. Euphonia laniirostris D'Orbigny & Lafresnaye, 1837
125. Euphonia xanthogaster Sundevall, 1834
126. Eutoxeres aquila (Bourcier, 1847)
127. Falco sparverius Linnaeus, 1758
128. Faramea glandulosa Poepp. & Endl.
129. Faramea oblongifolia Standl.
130. Ficus
131. Ficus brevibracteata W.C. Burger
132. Ficus insipida Willd.
133. Florisuga mellivora (Linnaeus, 1758)
134. Fraxinus uhdei (Wenz.) Lingelsh.
135. Gaiadendron punctatum (Ruiz & Pav.) G. Don
136. Geissanthus kalbreyeri Mez
137. Gesneriaceae
138. Graffenrieda uribei Wurdack
139. Guarea kunthiana A. Juss.
140. Guatteria crassipes R.E. Fr.
141. Guatteria goudotiana Triana & Planch.
142. Guatteria hirsuta Ruiz & Pav.
143. Handleyomys alfaroi (J.A. Allen, 1891)
144. Hedyosmum cf. bonplandianum Kunth
145. Heliconia
146. Heliocarpus americanus L.
147. Henicorhina leucophrys (von Tschudi, 1844)
148. Herpetotheres cachinnans (Linnaeus, 1758)
149. Hieronyma macrocarpa Müll. Arg.
150. Hieronyma scabrida (Tul.) Müll. Arg.
151. Hydrocotyle leucocephala Cham. & Schltdl.
152. Hypochaeris radicata L.
153. Hypodactylus mantipus (Boulenger, 1908)
154. Hypoxis decumbens L.
155. Hyptis
156. Icterus chrysater (Lesson, 1844)
157. Impatiens balsamina L.
158. Inga acrocephala Steud.
159. Inga cinnamomea Spruce ex Benth.
160. Inga oerstediana Benth. ex Seem.
161. Isachne
162. Kyllinga pumila Michx.
163. Lacistema aggregatum (P.J. Bergius) Rusby
164. Ladenbergia oblongifolia (Humb. ex Mutis) L. Andersson
165. Leiothlypis peregrina (Wilson, A, 1811)
166. Lepidocolaptes lacrymiger (Des Murs, 1849)
167. Leucostethus fraterdanieli (Silverstone, 1971)
168. Masius chrysopterus (Lafresnaye, 1843)
169. Matisia bolivarii Cuatrec.
170. Meliosma frondosa Cuatrec. & Idrobo
171. Meliosma occidentalis Cuatrec.
172. Meliosma schlimii (Turcz.) Triana & Planch.
173. Melothria pendula L.
174. Meriania speciosa (Bonpl.) Naudin
175. Miconia acuminifera Triana
176. Miconia aff. dodecandra Cogn.
177. Miconia affinis DC.
178. Miconia gracilis Triana
179. Miconia longifolia (Aubl.) DC.
180. Miconia neomicrantha Judd & Skean
181. Miconia prasina (Sw.) DC.
182. Miconia prasinifolia Gleason
183. Milvago chimachima (Vieillot, 1816)
184. Mionectes striaticollis (D'Orbigny & Lafresnaye, 1837)
185. Momotus aequatorialis Gould, 1858
186. Monstera
187. Myadestes ralloides (D'Orbigny, 1840)
188. Myioborus miniatus (Swainson, 1827)
189. Myiodynastes chrysocephalus (von Tschudi, 1844)
190. Myiothlypis coronata (von Tschudi, 1844)
191. Myiozetetes cayanensis (Linnaeus, 1766)
192. Myotis riparius Handley, 1960
193. Myrcia popayanensis Hieron.
194. Myrmotherula schisticolor (Lawrence, 1865)
195. Nectandra acutifolia (Ruiz & Pav.) Mez
196. Nectandra purpurea (Ruiz & Pav.) Mez
197. Nephelomys pectoralis (J.A. Allen, 1912)
198. Nombre científico
199. Norantea guianensis Aubl.
200. Nymphargus ignotus (Lynch, 1990)
201. Ocotea
202. Ocreatus underwoodii (Lesson, 1832)
203. Odontophorus hyperythrus Gould, 1858
204. Otoba lehmannii (A.C. Sm.) A.H. Gentry
205. Oxalis
206. Oxalis corniculata L.
207. Pachyramphus polychopterus (Vieillot, 1818)
208. Pachysylvia semibrunnea (Lafresnaye, 1845)
209. Palicourea angustifolia Kunth
210. Palicourea calophlebia Standl.
211. Palicourea deviae C.M. Taylor
212. Palicourea gomezii C.M. Taylor
213. Paspalum
214. Passiflora
215. Passiflora arborea Spreng.
216. Patagioenas subvinacea (Lawrence, 1868)
217. Paullinia obovata (Ruiz & Pav.) Pers.
218. Peperomia
219. Persea
220. Phaethornis guy (Lesson, 1833)
221. Phaethornis syrmatophorus Gould, 1852
222. Pheucticus ludovicianus (Linnaeus, 1766)
223. Pheugopedius mystacalis Sclater, PL, 1860
224. Philodendron verrucosum L. Mathieu ex Schott
225. Pholidobolus vertebralis (O'Shaugnessy, 1879)
226. Phyllanthus niruri L.
227. Piaya cayana (Linnaeus, 1766)
228. Picoides fumigatus (D'Orbigny, 1840)
229. Picramnia gracilis Tul.
230. Picrasma excelsa (Sw.) Planch.
231. Pilea centradenioides Seem.
232. Pilea scandens Killip
233. Pionus menstruus (Linnaeus, 1766)
234. Piper
235. Piper aduncum L.
236. Piper crassinervium Kunth
237. Piper imperiale (Miq.) C.DC.
238. Pipraeidea melanonota (Vieillot, 1819)
239. Pipreola riefferii (Boissonneau, 1840)
240. Piranga rubra (Linnaeus, 1758)
241. Plantago australis Lam.
242. Platyrinchus mystaceus Vieillot, 1818
243. Platyrrhinus dorsalis (Thomas, 1900)
244. Poecilotriccus ruficeps (Kaup, 1852)
245. Pogonotriccus ophthalmicus (Taczanowski, 1874)
246. Pogonotriccus poecilotis (Sclater, 1862)
247. Polygala paniculata L.
248. Pouteria torta (Mart.) Radlk.
249. Premnoplex brunnescens (Sclater, 1856)
250. Premnornis guttuliger (Sclater, 1864)
251. Prestoea acuminata (Willd.) H.E. Moore
252. Pristimantis brevifrons (Lynch, 1981)
253. Pristimantis calcaratus (Boulenger, 1908)
254. Pristimantis erythropleura (Boulenger, 1896)
255. Pristimantis juanchoi (Lynch, 1996)
256. Pristimantis orpacobates (Lynch, Ruíz-Carranza and Ardila-Robayo, 1994)
257. Pristimantis palmeri (Boulenger, 1912)
258. Pristimantis thectopternus (Lynch, 1965)
259. Pseudelephantopus spicatus (Juss. ex Aubl.) C.F. Baker
260. Psychotria
261. Psychotria hazenii Standl.
262. Pteridium arachnoideum (Kaulf.) Maxon
263. Pygochelidon cyanoleuca (Vieillot, 1817)
264. Pyrrhomyias cinnamomeus (D´Orbigny & Lafresnaye, 1837)
265. Ramphocelus flammigerus (Jardine & Selby, 1833)
266. Riama laevis (Boulenger, 1908)
267. Richardia scabra L.
268. Ruagea glabra Triana & Planch.
269. Rytidostylis trianae (Cogn.) Kuntze
270. Salacia
271. Saltator atripennis Sclater, 1856
272. Saltator striatipectus Lafresnaye, 1847
273. Sanicula liberta Cham. & Schltdl.
274. Sapium stylare Müll. Arg.
275. Saurauia brachybotrys Turcz.
276. Schistes geoffroyi (Bourcier, 1843)
277. Sclerurus obscurior andinus (Chapman, 1914)
278. Scytalopus latrans Hellmayr, 1924
279. Scytalopus spillmanni Stresemann, 1937
280. Scytalopus vicinior Zimmer, 1939
281. Selaginella
282. Selaginella anceps (C. Presl) C. Presl
283. Serjania diffusa Radlk.
284. Setophaga fusca (Statius Muller, 1776)
285. Sibon nebulatus (Linnaeus, 1758)
286. Sida rhombifolia L.
287. Siparuna laurifolia (Kunth) A. DC.
288. Smilax domingensis Willd.
289. Solanum americanum Mill.
290. Solanum anisophyllum Van Heurck & Müll. Arg.
291. Solanum deflexiflorum Bitter
292. Sorocea trophoides W.C. Burger
293. Spinus psaltria (Say, 1823)
294. Spirotheca rosea (Seem.) P.E. Gibbs & W.S. Alverson
295. Spizaetus ornatus (Daudin, 1800)
296. Sporophila nigricollis (Vieillot, 1823)
297. Stenospermation
298. Sturnira bidens (Tomas, 1915)
299. Sturnira ludovici Anthony, 1924
300. Synallaxis azarae D'Orbigny, 1835
301. Tangara arthus Lesson, 1832
302. Tangara episcopus (Linnaeus, 1766)
303. Tangara gyrola (Linnaeus, 1758)
304. Tangara heinei (Cabanis, 1850)
305. Tangara labradorides (Boissonneau, 1840)
306. Tangara nigroviridis (Lafresnaye, 1843)
307. Tangara ruficervix (Prévost & des Murs, 1846)
308. Tangara vitriolina (Cabanis, 1850)
309. Tapera naevia (Linnaeus, 1766)
310. Tetrorchidium rubrivenium Poepp.
311. Thalurania colombica (Bourcier, 1843)
312. Thamnophilus multistriatus Lafresnaye, 1844
313. Thamnophilus unicolor (Sclater, 1859)
314. Tiaris olivaceus (Linnaeus, 1766)
315. Tradescantia zanonia (L.) Sw.
316. Trichanthera gigantea (Bonpl.) Nees
317. Troglodytes aedon Vieillot, 1809
318. Trogon collaris Vieillot, 1817
319. Trogon personatus Gould, 1842
320. Turdus fuscater d'Orbigny & Lafresnaye, 1837
321. Turdus ignobilis Sclater, PL, 1858
322. Turdus leucops (Taczanowski, 1877)
323. Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819
324. Urotheca lateristriga (Berthold, 1859)
325. Vampyressa thyone Thomas, 1909
326. Varronia acuta (Pittier) Borhidi
327. Verbesina nudipes S.F. Blake
328. Vismia baccifera (L.) Triana & Planch.
329. Vochysia
330. Vochysia duquei Pilg.
331. Wedelia calycina Rich.
332. Xenops minutus (Sparrman, 1788)
333. Xenops rutilus Temminck, 1821
334. Xiphorhynchus erythropygius (Sclater, 1859)
335. Xiphorhynchus triangularis (Lafresnaye, 1842)
336. Youngia japonica (L.) DC.
337. Zentrygon frenata (Tschudi, 1843)
338. Zimmerius chrysops (Sclater, 1859)
339. Zonotrichia capensis (Müller, 1776)

Colombia, Depto Valle del Cauca, Mun La Cumbre, ver. Chicoral y Zaragoza, Reserva Forestal Protectora Regional Bitaco