Eventos de monitoreo de la especie plaga Didymosphenia geminata en cuerpos de agua de la zona centro sur austral de Chile, Etapa I (2016 - 2017)
Citation
Oyanedel A, Rojas Espinoza R, Ordóñez P, Figueroa Rojas C, Vera Torres P (2021). Eventos de monitoreo de la especie plaga Didymosphenia geminata en cuerpos de agua de la zona centro sur austral de Chile, Etapa I (2016 - 2017). Version 1.3. Subsecretaría de Pesca y Acuicultura. Sampling event dataset https://doi.org/10.15468/wryneh accessed via GBIF.org on 2024-12-12.Description
Monitoreo de la especie plaga Didymosphenia geminata en cuerpos de agua de la Zona Centro Sur Austral de Chile, que incluye ríos y lagos de importancia para la acuicultura y pesca recreativa de las regiones del Ñuble, Biobío, La Araucanía, Los Ríos, Los Lagos, Aysén y Magallanes.
Se presentan 330 eventos de muestreo, ocurridos entre septiembre de 2016 y octubre de 2017, con 1.300 registros de ocurrencia y 990 medidas asociadas a los eventos.
El proyecto “Monitoreo de la especie plaga Didymosphenia geminata en cuerpos de agua de la zona centro, sur y austral de Chile”, que mantiene la Subsecretaría de Pesca y Acuicultura (SSPA) de acuerdo al Reglamento de Plagas (REPLA) y que es ejecutado por el Instituto de Fomento Pesquero (IFOP); en el marco del Título VII artículo 92, letra D, de la Ley General de Pesca y Acuicultura, que regula los estudios de Investigación permanente de la SSPA. Este monitoreo se inició el año 2016 y se encuentra en la Etapa V (2020-2021). Para efectos de la presente publicación, se presentan los datos de la Etapa I, que abarca el periodo entre septiembre de 2016 – y octubre 2017.
La Etapa l tuvo una duración total de 14 meses. Se realizaron 2 campañas de muestreo, la primera campaña fue ejecutada entre octubre y diciembre de 2016, en época de primavera-verano, considerando 180 sitios de muestreo que abarcaron cuerpos de agua distribuidos entre la Región del Biobío, que incluye parte de la actual Región del Ñuble, y la Región de Magallanes y la Antártica Chilena. La segunda campaña se realizó entre marzo y julio de 2017, en época de otoño-invierno e incluyó 150 estaciones de muestreo abarcando desde la Región del Maule a la Región de Magallanes y la Antártica Chilena, incluyéndose en esa campaña, además, ríos y lagos de Tierra del Fuego.
En cada sitio de muestreo se registraron variables in situ como la temperatura del agua (°C), conductividad (µS/cm), sólidos suspendidos totales (ppm) y pH con equipos multiparámetros portátiles, entre otros.
Durante la campaña primavera-verano se registró la presencia de D. geminata en fitobentos, ensamble de diatomeas, fitoplancton y floraciones en 80 de las 180 estaciones de muestreo. En cambio, para la campaña de otoño invierno, se registró la presencia de la plaga en las diferentes muestras en 71 estaciones de las 150 estaciones muestreadas. En 124 de los 203 sitios de muestreo monitoreados durante esta etapa del Monitoreo, se registró la presencia de D. geminata en el fitobentos, fitoplancton, floraciones y/o ensamble de diatomeas bentónicas.
Sampling Description
Study Extent
El estudio considera un total de 180 estaciones durante la primera campaña y 150 estaciones durante la segunda campaña, localizadas en ríos selectos de las regiones del Maule, del Biobío (cuencas del río Biobío y río Itata), La Araucanía (cuencas de río Valdivia y río Bueno), Los Lagos (cuencas de río Yelcho, río Puelo y río Palena), Aysén (cuencas de río Aysén y río Baker) y Magallanes, incluida Tierra del Fuego.Sampling
En cada uno de los sitios de muestreo se efectuaron las siguientes actividades: Inspección visual y desarrollo de una ficha en terreno; muestreo bentónico y planctónico con colecta de muestras biológicas; registro de variables físicas y químicas in situ; toma de muestras de agua para la determinación de variables químicas; todo bajo procedimientos de bioseguridad. Se obtuvieron muestras de microalgas (fitoplancton y perifiton), macroinvertebrados bentónicos, se registraron los parámetros físicos y químicos. La obtención de muestras de fitoplancton se ejecutó empleando una red de plancton de 37 µm la cual fue instalada a contracorriente por 10 o 5 minutos en profundidades entre 0.3-0.6 metro de profundidad. A partir de esta muestra se verificó la presencia de didymo en la columna de agua y la composición de la comunidad fitoplanctónica. A partir del perifiton se obtuvieron muestras para el análisis de la comunidad perifítica completa, muestras para el análisis de diatomeas y muestras de floraciones, cuando esta última estuviera presente. Posteriormente, en laboratorio se procedió a la identificación de las microalgas en las diferentes muestras obtenidas. Los resultados de las muestras de perifiton y diatomeas bentónicas son de carácter cuantitativo en abundancia absoluta células/mm2, mientras que, para las muestras de floraciones, los resultados obtenidos tienen carácter cuantitativo, pero en abundancia relativa. Por último, las muestras de fitoplancton corresponden a muestras de carácter cualitativo representadas en presencia o ausencia de las especies en la muestra. -Análisis en laboratorio para muestras de perifiton, floraciones y fitoplancton presencia/ausencia El análisis de las muestras se realizó utilizando un microscopio invertido de marca Carl Zeiss modelo Primo Vert, en objetivo 40x siguiendo la técnica descrita por Utermöhl, 1958. Esta técnica consiste en sedimentar un volumen conocido en una cámara, el cual puede ser observado con el microscopio invertido. Se rellenará la base de sedimentación con 1 ml de muestra previamente homogeneizada y en el caso de floraciones, debido a la alta densidad será necesario tomar 1 ml de muestra y llevarla a 15 ml con agua filtrada, para luego de esa dilución tomar 1 ml y llevarlo a la base de sedimentación. Tanto para las muestras de fitoplancton (presencia/ausencia) como para las de fitobentos y floraciones se realizó la identificación taxonómica a nivel de género, mediante el uso de literatura especializada de Krammer & Lange-Bertalot, 2000; Komárek & Fott, 1983; Parra & Bicudo. 1996; Parra, 1975, 2006; Pereira & Parra, 1984; Parra et al. 1982, 1983, 2005; Rivera et al. 1973, 1983; Rumrich et al. 2000. Para efectuar el recuento se procede a contar un número determinado de campos ópticos elegidos al azar, una técnica utilizada para estandarizar este recuento es contabilizar como mínimo 100 campos ópticos y un mínimo de 300 células por muestra (Alveal et al. 1995). - Análisis en laboratorio para muestras de ensamble de diatomeas Previo a la oxidación de la muestra, se realizará el conteo de células viables, para posteriormente corregir las densidades totales obtenidas del análisis de diatomeas y, específicamente, el porcentaje de células viables de D. geminata. Luego, se efectuará la oxidación de la materia orgánica y eliminación de las sales disueltas, utilizando la metodología propuesta por Battarbee (1986), donde se extrae una alícuota de muestra, la que será sometida a calor más peróxido de hidrogeno al 30% en un baño maría modelo YCW-04M. Posteriormente se lavaran las muestras con agua destilada, utilizando una centrifuga SIGMA modelo 1-6P. 2010. Luego se tomará desde un volumen conocido de muestra, y se dejará secar. Posteriormente se realizarán muestras permanentes con resina Naphrax (I.R=1.7) como medio de montaje. Para cada muestra se realizará un conteo de 300 valvas como mínimo. La identificación se realizará a nivel de especie utilizando un microscopio Carl Zeiss modelo Primo Star, con objetivo de inmersión de 100X, literatura especializada para diatomeas (Barber & Carter, 1996; Krammer & Lange-Bertalot, 2000; Rivera et al., 1982; Rumrich et al., 2000) y sitios web con taxonomía actualizada (https://diatoms.org// & http://craticula.ncl.ac.uk/EADiatomKey/html/index.html) Posteriormente los resultados obtenidos se expresarán en abundancias absolutas (cel/mm2 ) y abundancias relativas siguiendo la metodología de Battarbee (1986).Quality Control
Es importante destacar que este corresponde al primer monitoreo de la plaga D. geminata que integra un solo esfuerzo de muestreo, desde la Región del Maule hasta Magallanes incluida Tierra del Fuego, y aborda todas las cuencas donde se ha reportado la presencia de didymo en su fase macroscópica y microscópica. En relación con los datos obtenidos a partir de este monitoreo de la especie D. geminata es que se efectúa una revisión extensa de la base de datos original y la metadata proporcionada por el Instituto de Fomento Pesquero, con el objetivo de entender la estructuración de los datos, siguiendo los estándares de calidad generados en conjunto con el Ministerio del Medio Ambiente. El primer paso para efectuar la sistematización de los datos fue identificar el conjunto de datos como un “Evento de monitoreo” (Event core) y sus respectivas extensiones de “Ocurrencias” (“Occurrence”) y “Medidas y Hechos” (“measurementOrFact”). A continuación, se describe la estructuración del núcleo de evento, y las extensiones de Ocurrencia y Medidas y Hechos.Method steps
- Evento de Muestreo Una vez identificadas las extensiones y el núcleo del evento, se hizo un mapeo de la información original para detectar aquellos campos que tenían una correspondencia directa con el Estándar Darwin Core, como es el caso de los campos del núcleo de evento: “eventTime”, “country”, “countryCode”, “stateProvince”, “county”, “municipality”, “waterBody”, “verbatimElevation”, “verbatimLatitude”, “verbatimLongitude”, “verbatimCoordinateSystem”, “decimalLatitude”, “decimalLongitude”, “geodeticDatum” e “institutionCode”. Para el caso de las fechas originales, estas fueron transformadas según la norma ISO 8601-1:2019 utilizando la herramienta “Date Parsing”. Por otro lado, fue necesaria la creación de nuevos campos como “eventID” y “parentEventID” para lo cual se empleó en términos generales el código de la institución a cargo (“SUBPESCA: IFOP”), la especie objetivo del monitoreo (“DIDYMO”), la estación, campaña y código completo de la estación (“cod_est”). La información que no se encontraba en la base de datos original fue completada a partir del informe “Monitoreo de la especie plaga Didymosphenia geminata” en cuerpos de agua de la zona centro-sur austral, Etapa l 2016-17”, desde donde fue posible extraer los campos de “hábitat”, “samplingProtocol”, “sampleSizeUnit”, “samplingEffort” y “geodeticDatum”. Por último, para el campo “locationRemarks” se construyó a partir de los campos originales de “cuenca”, “subcuenca” y “subsubcuenca”. En el caso del campo “locationID”, se le designó la información correspondiente a “cod_sscuenca” y para el campo “locality” se le designó la unión entre “cod_sscuenca” y el nombre de la subsubcuenca.
- Ocurrencias Los valores de presencia/ausencia de didymo se obtuvieron a partir de información obtenida en cada estación donde se monitoreó perifiton, diatomeas, fitoplancton y floraciones, estructurándose la presencia por cada estación de monitoreo y asociándose el valor de ocurrencia de la especie didymo para cada uno de los grupos anteriores. A partir del campo “eventID” se elaboró el “occurrenceID” con la concatenación de “eventID”, “collectionCode” y “catalogNumber”. Otros campos de esta extensión se completaron con la información existente en la base de datos original y el informe, que corresponden a los campos de “ScientificName”, “occurrenceStatus”, “organismQuantity”, “organismQuantityType”, “basisOfRecord”, “type”, “datasetName”. La taxonomía de las ocurrencias (kingdom, phylum, class, order, family, genus,specificEpithet, infraspecificEpithet) se completó utilizando la herramienta Species Matching de GBIF. Finalmente, para estructurar la presencia/ausencia de la especie plaga se utilizó el campo “occurrenceStatus”.
-
Extensión de Medidas y Hechos
Tal como se indicó en un comienzo, el monitoreo también consideró la obtención de parámetros fisicoquímicos, por lo que fue necesario agrupar al menos 3 de los parámetros más importantes (temperatura, conductividad eléctrica y fósforo total) en una extensión de medidas y hechos (“measurementOrFact”). La estructuración de los datos fue similar a la extensión de Ocurrencias, es decir, asociando a cada estación los datos de los parámetros antes señalados.
Para esta extensión, se crearon los campos “measurementID” a partir del “eventID”, mientras que los otros campos fueron completados con la información disponible en la base de datos original, correspondientes a: “measurementType”, “measurementValue”, “measurementUnit”, “measurementDeterminedBy”, “measurementDeterminedDate” y “measurementMethod”.
Taxonomic Coverages
-
Didymosphenia geminatacommon name: Didymo rank: species
Geographic Coverages
Bibliographic Citations
- Alveal, K., M.E. Ferrario, E.C. Oliveiro & E. Sar (Edit). 1995. Manual de Métodos Ficológicos. Editorial Anibal Pinto S.A., Concepción, Chile. 863 pp. -
- Barber, H & J. Carter, 1996. An atlas of British diatoms. Biopress Limited, Bristol, United Kingdom. 600 pp. -
- Battarbee, R. 1986. Diatom analysis. In: Handbook of Holocene Paleoecology and Paleohidrology (E.BB ed). John Wiley & Sons Ltd. Chichester, 527-570. -
- Blanco S. & Ector L. (2009) Distribution, ecology and nuisance effects of the freshwater invasive diatom Didymosphenia geminata (Lyngbye) M. Schmidt: a literature review. Nova Hedwigia,88, 347-422. -
- Bothwell M.L. & Kilroy C. (2011) Phosphorus limitation of the freshwater benthic diatom Didymosphenia geminata determined by the frequency of dividing cells. Freshwater Biology,56, 565-578. -
- Bothwell M.L., Lynch D.R., Wright H. & Deniseger J. (2009) On the boots of fishermen: The history of Didymo blooms on Vancouver Island, British Columbia. Fisheries, 34, 382-388. -
- Bothwell M.L. & Taylor B.W. (2017) Blooms of benthic diatoms in phosphorus-poor streams. Frontiers in Ecology and the Environment, 15, 110-111. -
- Bothwell M.L., Taylor B.W. & Kilroy C. (2014) The Didymo story: the role of low dissolved phosphorus in the formation of Didymosphenia geminata blooms. Diatom Research, 29, 229-236. -
- Bray J, Kilroy C, Gerbeaux P, Harding JS. (2017) Ecological eustress? Nutrient supply, bloom stimulation and competition determine dominance of the diatom Didymosphenia geminata. Freshwater Biol. 62: 1433–1442. -
- Bus P., Cerda J., Sala S. & Reid B. (2014) Mink (Neovison vison) as a natural vector in the dispersal of the diatom Didymosphenia geminata. Diatom Research. 29:3, 259-266. Campos H. (1995) Determinación de la capacidad de carga (stock explotable) y balance de fósforo y nitrógeno en el Lago Rupanco, X Región. Valdivia. Instituto de Zoología. Facultad de Ciencias. Universidad Austral de Chile. -
- Catford J.A., Daehler C.C., Murphy H.T., Sheppard A.W., Hardesty B.D., Westcott D.A., Rejmánek M., Bellingham P.J., Pergl J. & Horvitz C.C. (2012) The intermediate disturbance hypothesis and plant invasions: Implications for species richness and management. Perspectives in Plant Ecology, Evolution and Systematics, 14, 231-241. -
- Clarke K. & Gorley R. (2006) PRIMER V6. User Manual Tutorial. Plymouth. Cox, E.J. (2015). Coscinodiscophyceae, Mediophyceae, Fragilariophyceae, Bacillariophyceae (Diatoms). In: Sylabus of plant families. Adolf Engler's Syllabus der Pflanzenfamilien. 13th Ed. Photoautotrophic eukaryotic algae Glaucocystophyta, Cryptophyta, Dinophyta/Dinozoa, -
- Heterokontophyta/Ochrophyta, Chlorarachniophyta/Cercozoa, Euglenophyta/Euglenozoa, Chlorophyta, Streptophyta pp. (Frey, W. Eds), pp. 64-103. Berlin: Borntraeger Science Publishers. -
- Cullis J.D.S., Crimaldi J.P. & Mcknight D.M. (2013) Hydrodynamic shear removal of the nuisance stalk-forming diatom Didymosphenia geminata. Limnology and Oceanography: Fluids and Environments, 3, 256-268. -
- Figueroa R., Valdovinos C., Araya E. & Parra O. (2003) Macroinvertebrados bentónicos como indicadores de calidad de agua de ríos del sur de Chile. Revista chilena de historia natural,76, 275-285. -
- Gerrath JF (2003). Conjugating green algae and desmids. Freshwater Algae of North America. Academic (Wehr, J.D. & Sheath, R.G. Eds) pp 353-381. San Diego: Academic Press. -
- Gillis C.-A. & Chalifour M. (2010) Changes in the macrobenthic community structure following the introduction of the invasive algae Didymosphenia geminata in the Matapedia River (Québec, Canada). Hydrobiologia, 647, 63-70. -
- Griffith MB, Hill BH, Herlihy AT, Kaufmann PR. 2002. Multivariate analyses of periphyton assemblages in relation to environmental gradients in Colorado rocky montain streams. Journal of Phycology. 38:83-95. -
- Guiry, M.D. (2013). Taxonomy and nomenclature of the Conjugatophyceae (=Zygnematophyceae). Algae. An International Journal of Algal Research 28: 1-29. -
- Heino J. (2011) A macroecological perspective of diversity patterns in the freshwater realm. Freshwater Biology, 56, 1703-1722. -
- Hegewald, E., Wolf, M., Keller, A. Friedl, T. & Krienitz, L. (2010). ITS2 sequence-structure phylogeny in the Scenedesmaceae with special reference to Coelastrum (Chlorophyta, Chlorophyceae), including the new genera Comasiella and Pectinodesmus. Phycologia 49(4): 325-335. -
- Huber A., Iroumé A., Mohr C. & Frêne C. (2010) Efecto de plantaciones de Pinus radiata y Eucalyptus globulus sobre el recurso agua en la Cordillera de la Costa de la región del Biobío, Chile. Bosque (Valdivia), 31, 219-230. -
- Jackson L., Corbett L. & Scrimgeour G. (2016) Environmental constraints on Didymosphenia geminata occurrence and bloom formation in Canadian Rocky Mountain lotic systems. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 73:964-972. -
- Jara C.G., Rudolph E.H. & González E.R. (2006) Estado de conocimiento de los malacostráceos dulceacuícolas de Chile. Gayana (Concepción), 70, 40-49. -
- John, D.M., Wynne, M.J. & Tsarenko, P.M. (2014). Reinstatement of the genus Willea Schmidle 1900 for Crucigeniella Lemmermann 1900 nom. illeg. (Chlorellales, Trebouxiophyceae, Chlorophyta). Phytotaxa 167(2): 212-214, no figs. -
- Kawecka B. & Sanecki J. (2003) Didymosphenia geminata in running waters of southern Poland–symptoms of change in water quality? Hydrobiologia, 495, 193-201. -
- Kilroy C., Larned S. & Biggs B. (2009) The non‐indigenous diatom Didymosphenia geminata alters benthic communities in New Zealand rivers. Freshwater Biology, 54, 1990-2002. -
- Krammer, K. & H. Lange-Bertalot. 2000. Siisswasserflora von MitteleuropaBacillariophyceaeTeil: Centrales, Fragilariaceae, Eunotiaceae. Fischer Verlag, Stuttgart, Stuttgart, Germany.598 pp. -
- Kociolek, J.P. & Spaulding, S.A. (2003). Symmetrical Naviculoid Diatoms. In: Freshwater Algae of North America, Ecology and Classification. (Wehr, J.D. & Sheath, R.G. Eds), pp. 637-654. San Diego: Academic Press -
- Komárek, J. & Fott, B. 1983. Chlorophyceae (Chlorococcales). In: Huber-Pestalozzi, G. (Ed.). Das Phytoplankton das Susswassers. Die Binnengewässer. Vol. 7.Stuttgart 1044 pp. -
- Kumar S., Spaulding S.A., Stohlgren T.J., Hermann K.A., Schmidt T.S. & Bahls L.L. (2009) Potential habitat distribution for the freshwater diatom Didymosphenia geminata in the continental US. Frontiers in Ecology and the Environment, 7, 415-420. -
- Lake P. (2000) Disturbance, patchiness, and diversity in streams. Journal of the North American Benthological Society, 19, 573-592. -
- Lowe, R.L. (2003). Keeled and Canalled Raphid Diatoms. In: Freshwater Algae of North America, Ecology and Classification. (Wehr, J.D. & Sheath, R.G. Eds), pp. 669-684. San Diego: Academic press. -
- Lytle D.A. & Poff N.L. (2004) Adaptation to natural flow regimes. Trends in ecology & evolution, 19,94-100. -
- Morales E., Rivera S., Veizaga A. & Fiorini R. (2012) Didymosphenia geminata (Lyngbye) M. Schmidt (Bacillariophyta), una especie invasora y potencial amenaza para ecosistemas acuáticos bolivianos. Acta Nova. 5: 3, 327-343. -
- Nozaki, H. (2003). Flagellated green algae. Freshwater algae of North America: ecology and classification, 225-252. -
- Oyarzún C.E. (1995) Land use, hydrological properties, and soil erodibilities in the Bio-Bio River Basin, Central Chile. Mountain Research and Development, 331-338. -
- Paavola R., Muotka T., Virtanen R., Heino J., Jackson D. & Mäki-Petäys A. (2006) Spatial scale affects community concordance among fishes, benthic macroinvertebrates, and bryophytes in streams. Ecological Applications, 16, 368-379. -
- Padisák, J., Grigorszky, I., Borics G. & Ésoróczki, P. 2006. Use of phytoplankton assemblages for monitoring ecological status of lakes within the Water Framework Directive: The assemblage index. Hydrobiologia 553: 1–14. -
- Parra, O. 1975. Desmidiáceas de Chile I. Desmidiáceas de la Región de Concepción y alrededores. Gayana Botánica. 30: 1-91. -
- Parra, O. 2006. Estado de conocimiento de las algas dulceacuícolas de Chile (Excepto Bacillariophyceae). Gayana (Concepción) 70: 8-15. -
- Parra, O. & C. M. Bicudo. 1996. Algas de Aguas Continentales: Introducción a la Biología y Sistemática. Ediciones Universidad de Concepción. 268 pp -
- Parra, O., Valdovinos, C., Basualto, S. & R. Urrutia. 2005. Diversidad fitoplanctónica de los lagos nahuelbutanos (Chile Central). In Smith-Ramírez, C., J. Armesto& C. Valdovinos (eds.) Historia, biodiversidad y ecología de los bosques costeros de Chile. Editorial Universitaria. 146- 157 pp. -
- Pereira, I. & Parra, O.1984. Algas filamentosas dulceacuícolas de chile. I. Algas bentónicas de Concepción. GayanaBotanica 41 (3-4): 141-200. -
- Poff N.L., Allan J.D., Bain M.B., Karr J.R., Prestegaard K.L., Richter B.D., Sparks R.E. & Stromberg J.C. (1997) The natural flow regime. BioScience, 47, 769-784. -
- Poff N.L. & Ward J.V. (1989) Implications of Streamflow Variability and Predictability for Lotic Community Structure: A Regional Analysis of Streamflow Patterns. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 46, 1805-1818. -
- Potapova M and Charles D. 2007. Diatom metrics for monitoring eutrophication in rivers of the United States. 48–70. Ecol Indic. 77: 48–70. -
- Reid B. & Torres R. (2014) Didymosphenia geminata invasion in South America: Ecosystem impacts and potential biogeochemical state change in Patagonian rivers. Acta oecologica, 54, 101-109. -
- Reid B.L., Hernández K.L., Frangópulos M., Bauer G., Lorca M., Kilroy C. & Spaulding S. (2012) The invasion of the freshwater diatom Didymosphenia geminata in Patagonia: prospects, strategies, and implications for biosecurity of invasive microorganisms in continental waters. Conservation Letters, 5, 432-440. -
- Resh V.H., Brown A.V., Covich A.P., Gurtz M.E., Li H.W., Minshall G.W., Reice S.R., Sheldon A.L., Wallace J.B. & Wissmar R.C. (1988) The role of disturbance in stream ecology. Journal of the North American Benthological Society, 7, 433-455. -
- Rivera, P., Parra, O. & M. González. 1973. Fitoplancton del estero Lenga, Chile. GayanaBotánica. 23: 1-93. -
- Rivera, P., 1983. A Guide for References and Distribution for the Class Bacillariophyceae in Chile between 18º28'S and 58ºS.Bibliotheca Diatomologica Vol. 3, 386 pp. -
- Rivera P., O. Parra, M. González, V. Dellarossa, & M. Orellana. Manual Taxonómico del Fitoplancton de Aguas Continentales; con especial referencia al fitoplancton de Chile. Editorial de la Universidad de Concepción. -
- Rivera P., Basualto S. & Cruces F. (2013) Acerca de la diatomea Didymosphenia geminata (Lyngbye) M. Schmidt: su morfología y distribución en Chile. Gayana. Botánica, 70, 154-158. -
- Rost A., Fritsen C. & Davis C. (2011) Distribution of freshwater diatom Didymosphenia geminata in streams in the Sierra Nevada, USA, in relation to water chemistry and bedrock geology. Hydrobiologia. 665:157–167. -
- Rumrich, U., Lange-Bertalot, H. & Rumrich, M. 2000.Diatomeen der Anden: Von Venezuela bis Patagonien/Feuerland und zweiweitere Beitráge. Iconographia Diatomológica, Volume 9. Koeltz scientific Books, Koenigstein, Germany. 673 pp. -
- Sant'Anna, C., M.T. Azevedo, L.F. Agujaro, L.R.M. de Carvalho & R.C.R. Souza. 2006. Manual ilustrado para identificação e contagem de cianobactériasplanctônicas de águascontinentais brasileiras. Rio de Janeiro: Interciência. 58 pp. -
- Segura P. (2011) A Slimy Invader Blooms in the Rivers of Patagonia. Science, 331, 18-18. -
- Spaulding S. & Elwell L. (2007) Increase in nuisance blooms and geographic expansion of the freshwater diatom Didymosphenia geminata: recommendations for response. White Paper. USEPA Region, 8. -
- Stoermer, E.F. & Julius, M.L. (2003). Centric Diatoms. In: Freshwater Algae of North America. (Wehr, J.D. & Sheath, R.G. Eds), pp. 559-594. San Diego: Academic Press -
- Tsarenko, P.M. (2011). Sphaeropleales. In: Algae of Ukraine: diversity, nomenclature, taxonomy, ecology and geography. Volume 3: Chlorophyta. (Tsarenko, P.M., Wasser, S.P. & Nevo, E. Eds), pp. 280-355. Ruggell: A.R.A. Gantner Verlag K.-G. -
- Utermöhl, 1958. Zur Vervoll Kommnung der quantitativen. Phytoplankton-Methodik.Mitt. Int. Verein. Limnol. 9: 1-38. -
- Vol. 1, Cyanophyceae, pp. 1-70, 174 figs., 1982. -
- Vol. 2, Chrysophyceae-Xanthophyceae, pp.1-82, 155 figs., 1982. -
- Vol. 3, Cryptophyceae, Dinophyceae y Euglenophyceae, pp. 1-99, 225 figs., 1982. -
- Vol. 4, Bacillariophyceae, pp. 1-97, 239 figs., 1982. -
- Vol. 5, Chlorophyceae, Parte 1: Volvococcales, Tetrasporales, Chlorococcales y Ulothricales y Parte 2: Zygnematales, pp. 1-353, 1286 figs., 1983. -
- Ward J. & Stanford J. (1983) Intermediate-disturbance hypothesis: an explanation for biotic diversity patterns in lotic ecosystems. Dynamics of Lotic Systems, Ann Arbor Science, Ann Arbor MI. 1983. 347-356 p, 2 Figura, 35 ref -
Contacts
Alejandra Oyanedeloriginator
position: Jefe de Proyecto
Instituto Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 331 1224
email: alejandra.oyanedel@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Rodrigo Rojas Espinoza
originator
position: Investigador
Instituto Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 3311339
email: rodrigo.rojas.espinoza@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Pablo Ordóñez
originator
position: Investigador
Instituto Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 3311339
email: pablo.ordonez@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Constanza Figueroa Rojas
originator
position: Pasante en Ministerio del Medio Ambiente
Ministerio del Medio Ambiente
San Martín 73
Santiago
Región Metropolitana
CL
email: cntzfigueroa@gmail.com
homepage: https://mma.gob.cl/
Paulina Vera Torres
originator
position: Profesional Unidad de Gestión Sanitaria y Plagas
Subsecretaria de Pesca y Acuicultura
Bellavista 168
Valparaíso
Región de Valparaíso
CL
Telephone: (+56 32) 2502872
email: pvera@subpesca.cl
homepage: http://www.subpesca.cl
Alejandra Oyanedel
metadata author
position: Jefe de Proyecto
Instituto Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 331 1224
email: alejandra.oyanedel@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Rodrigo Rojas Espinoza
metadata author
position: Investigador
Instituto de Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 3311339
email: rodrigo.rojas.espinoza@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Pablo Ordóñez
metadata author
position: Investigador
Instituto de Fomento Pesquero
José Manuel Balmaceda 252
Puerto Montt
Región de Los Lagos
CL
Telephone: (+56 32) 3311339
email: pablo.ordonez@ifop.cl
homepage: http://www.ifop.cl
Constanza Figueroa Rojas
editor
position: Pasante en Ministerio del Medio Ambiente
Ministerio del Medio Ambiente
San Martín 73
Santiago
Región Metropolitana
CL
email: cntzfigueroa@gmail.com
homepage: https://mma.gob.cl/
Allan Gómez Aravena
administrative point of contact
position: Profesional Departamento de Análisis Sectorial
Subsecretaría de Pesca y Acuicultura
Bellavista 168, piso 19
Valparaíso
2340000
Región de Valparaíso
CL
Telephone: (56-32)2502856
email: agomez@subpesca.cl
homepage: http://www.subpesca.cl
Yanina Figueroa Cubillos
administrative point of contact
position: Profesional Departamento de Análisis Sectorial
Subsecretaría de Pesca y Acuicultura
Bellavista 168, piso 19
Valparaíso
2340000
Región de Valparaíso
CL
Telephone: (56-32)2502888
email: yfigueroa@subpesca.cl
homepage: http://www.subpesca.cl
Paulina Vera Torres
administrative point of contact
position: Profesional Unidad de Gestión Sanitaria y Plagas
Subsecretaria de Pesca y Acuicultura
Bellavista 168
Valparaíso
Región de Valparaíso
CL
Telephone: (+56 32) 2502872
email: pvera@subpesca.cl
homepage: http://www.subpesca.cl