Registros biológicos de especies de fauna vertebrada terrestre en la central hidroeléctrica Miel I - 2007

Study Extent

La Central Hidroeléctrica Miel I, se ubica en la jurisdicción de los municipios Norcasia, Samaná y Victoria (Caldas). La principal cuenca del embalse Amaní es el río La Miel, éste recibe las corrientes superficiales del río Moro y de la quebrada Santa Bárbara. El área presenta una topografía de relieve montañoso, ligeramente quebrado con pendientes fuertes, altas y escarpadas; los suelos son superficiales y erosionados por quemas periódicas para pastos y cultivos transitorios en zonas aledañas al área de influencia de la central. La zona de estudio, se caracteriza por tener un régimen bimodal de dos periodos de lluvia, el primero entre abril a mayo y el segundo entre septiembre a diciembre; al igual que dos periodos secos enero a marzo y junio a agosto. Los niveles de precipitación oscilan entre 2000 y 4000 mm3 y la humedad relativa varia entre el 60% y 100% durante el año. La biotemperatura media anual es de 25.5 °C, con variaciones medias mensuales entre 24 ºC y 28ºC y una altitud que no sobrepasa los 1000 msnm. La región corresponde a la zona de vida bosque húmedo tropical (bh-T).

Sampling

Anfibios y reptiles (herpetofauna) Los anfibios y reptiles fueron registrados utilizando el método por encuentro visual (VES) (Crump & Scott, 1994). Este método consiste en la observación directa de las diferentes especies localizadas en los microhábitats disponibles para la herpetofauna, como hojarasca, troncos caídos, piedras, ramas, troncos de árboles, orilla e interior de cuerpos de agua, entre otros, prestando mayor atención a las charcas, quebradas y otros sitios susceptibles de ser usados como ambientes reproductores por parte de las distintas especies de anfibios y áreas de alimentación por las serpientes. También se reportaron datos indirectos como los cantos emitidos por los machos de anuros durante la noche, lo que permitió en algunas ocasiones reconocer hasta el nivel de especie. El VES fue aplicado conjuntamente con el recorrido de transectos lineales de una longitud de 50 mt por dos de ancho, los cuales atravesaron áreas representativasmde cada hábitat (bosque, rastrojo alto y área intervenida) y fueron recorridos pormdos personas (observadores). Se recorrieron los sitios entre las 8:00 y las 12:00 a.m. y entre las 6:00 y las 9:00 p.m para la identificación de especies de actividad diurna y nocturna respectivamente. Los muestreos nocturnos son muy esenciales en la búsqueda de anfibios y reptiles pues alrededor del 80% de las especies de estos grupos son de hábitos nocturnos, este método de muestreo es útil para estimar la composición de especies, la abundancia, la densidad relativa y la asociación de los especimenes a hábitats y microhábitats ocupados. Al iniciar la búsqueda se tomaron datos sobre la localización como: municipio, vereda y coordenadas, también, se describió la cobertura del dosel, presencia o ausencia de hojarasca, DAP aproximado de los árboles, vegetación asociada a cada hábitat, pendiente y características del suelo, además de la hora de inicio y finalización del recorrido. Los animales se colectaron directamente con la mano y posteriormente almacenados en bolsas plásticas sellables o de tela, con hojas húmedas para evitar deshidratación (figura 13). Al realizar las capturas, el avistamiento o al escuchar las vocalizaciones, se registraron datos sobre el microhábitat que ocupaban los ejemplares y el número de individuos por especie. Además, se realizó un registro fotográfico por especie y posteriormente fue liberada en el mismo sitio en el cual se hallo. Aves La evaluación de la avifauna se efectuó mediante dos metodologías: captura con redes de niebla y transectos, en los cuales se efectuaron registros visuales y auditivos en los bosques, rastrojos y áreas intervenidas descritos anteriormente. Redes de niebla Las redes de niebla han sido utilizadas para la recolección de aves y se han convertido en una herramienta efectiva para el monitoreo de poblaciones. Se empleó el mismo tipo de red durante toda la fase del estudio correspondiente a una red tipo ATX 12 de 12m de largo por 2.6 de ancho con ojo de malla extendida de 30 a 36 mm. En total el área de cubrimiento fue de de 60 m de largo por 2.6 m de ancho (156 m2). Las redes se ubicaron siempre en los mismos hábitats durante todo el estudio (bosque, rastrojo alto y área intervenida), se utilizaron tres redes extendidas simultáneamente a las 6:00 am. El tiempo promedio entre la apertura de la primera y última red se referenció como el tiempo de apertura. Estas fueron abiertas entre las 6: 00 y 11:00 horas y entre las 15:00 y 18:00 periodos considerados de mayor actividad, así mismo las redes fueron revisadas con una periodicidad mínima de 30 minutos. Además, se registraron los siguientes atributos: peso, sexo, edad, estado reproductivo, muda del plumaje, como sus medidas morfométricas: Longitud del pico o cúlmen expuesto, longitud de la cola, longitud del tarso, longitud del ala. Todas las capturas fueron marcadas mediante el corte de una de las plumas de la cola para reconocer los ejemplares recapturados. Así mismo, se obtuvo registro fotográfico de los primeros ejemplares de cada especie, sexo y estado de madurez. Transectos Corresponden a líneas rectas de 100m de longitud que atraviesan los diferentes tipos de coberturas, el observador se desplaza lentamente y en silencio hasta un punto y se detiene, luego de tres minutos anota todas las aves que logró observar y escuchar durante cinco minutos, después de esto continua y repite el procedimiento anterior hasta completar los 100m. Se establecieron dos transectos diarios en un hábitat, para un total de una repetición. Además, el rumbo fue definido siguiendo una trayectoria paralela a las redes de niebla iniciando siempre el recorrido en la red número uno. Cada transecto fue visitado ocho veces durante cada muestreo a la misma hora y con igual duración. Las observaciones se realizaron en la mañana (6:00 a 10:00 am.) y/o al atardecer (15:30 hasta 18:00 pm.) siempre y cuando las condiciones climáticas lo permitían. Se diferenciaron las especies residentes de las migratorias, así como anotaciones sobre comportamientos específicos, hábitos alimenticios, también, se registraron indicios de nidificación y si las especies son endémicas o casi endémicas. Mamíferos Para la caracterización de la mastofauna en la zona, se realizaron tres metodologías: trampeo para capturas de mamíferos pequeños y medianos, redes de niebla para murciélagos y censos para avistamiento de mamíferos grandes, en las diferentes coberturas vegetales (bosque, rastrojo, área intervenida) anteriormente descritas. Mamíferos pequeños no voladores Para la captura de pequeños mamíferos no voladores se utilizaron dos tipos de trampas, Sherman® y Tomahawk, las cuales se instalaron en líneas de trampeo de 500m aproximadamente siempre y cuando el terreno lo permitiera, intercalando un tipo de trampa con otro a una distancia aproximada de 8 a 10 m entre cada una. Estas se ubicaron en el mayor número de microhábitats posibles como troncos caídos, cerca a la base de árboles, cavidades formadas por las raíces y alrededor de huecos y madrigueras. Se instalaron 12 trampas Sherman® (3 x 3.5 x 9") y 12 Tomahawk todas a nivel de piso. Se utilizó como cebo una mezcla de maní, avena, esencia de vainilla y panela para las Sherman® y sardina en aceite o salsa de tomate para las Tomahawk, las trampas fueron revisadas diariamente a las 7:00 y recebadas a las 16:00 con el fin de minimizar la pérdida de cebos por hormigas y otros insectos. El esfuerzo empleado durante el monitoreo fueron 36 noches efectivas de muestreo y un total de 804 trampas. Mamíferos Voladores (Quirópteros) Para la captura de murciélagos se utilizaron dos redes de niebla tipo (mist-nets) de 38mm, 12 metros de ancho, 50/2 de calibre, y 2.6 metros de altura. Éstas se ubicaron teniendo en cuenta el borde del bosque, claros del bosque, corredores naturales, orillas de quebradas y plantas asociadas a los murciélagos (figura 18). Las redes se abrieron a las 15:30 h y se cerraron a las 21:30 h, periodos considerados de mayor actividad para este grupo y fueron revisadas periódicamente según la actividad. Los murciélagos capturados se bajaron de la red y se depositaron en bolsas de tela de algodón. Posteriormente se registró los datos de localidad, fecha, hora de captura, sexo, medidas morfométricas según Emmons & Feer (1999) y todas las características externas necesarias para su correcta identificación. La determinación de los ejemplares capturados se hizo en el campo hasta género o especie cuando era posible. Mamíferos grandes Colección de Rastros y Censos Visuales Dado la difícil captura de mamíferos grandes, para su registro se utilizo la colección de rastros como huellas, excrementos, dormideros o comederos. Las huellas se fotografiaron para su posterior identificación. Para el conteo de los individuos solo se tuvo en cuenta rastros que aseguraran no pertenecían a un mismo individuo, para esto se tuvo en cuenta la distancia entre los rastros de una misma especie, además del tamaño de la huella. Durante el día también se realizaron recorridos de aproximadamente una hora por los lugares de muestreo con el fin de realizar la observación directa de algunos mamíferos diurnos como primates, también en las noches, alterno al muestreo de murciélagos se realizaron censos visuales, ya que la mayoría de mamíferos son nocturnos. Registro de individuos capturados Para los individuos capturados mediante cualquiera de la metodologías se registraron los datos de localidad, hora de captura, sexo, condición reproductiva y las medidas biométricas externas tradicionales para mamíferos: longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud del antebrazo (solo para murciélagos) y el peso (en gramos). Las hembras fueron clasificadas como reproductivamente activas cuando evidenciaron un estado de preñez avanzado y/o lactancia, e inactivas cuando ninguno de estos signos fue detectado; en los machos fue registrada la posición de los testículos, escrotales o abdominales. Todas las mediciones se realizaron con un calibrador (0.05mm) y con una regla metálica de borde recto o cinta métrica (1mm). Asimismo, fue realizado un registro fotográfico digital de los individuos capturados de cada especie en cada uno de los sitios de muestreo.

Quality Control

Ajuste de vocabularios controlados en: Elementos de registros: type y collectionID de acuerdo a la naturaleza de los datos; Elementos geográficos: county;

Method steps

1. Inicialmente, se hizo una búsqueda y se recopilo la información bibliográfica relacionada con estudios sobre fauna realizados en la zona o en ambientes similares.
2. Se consultó literatura específica sobre la biología y ecología de las especies de vertebrados encontradas en el área de estudio, con el fin de enriquecer los elementos de discusión.
3. Para la obtención de información primaria se realizaron cuatro salidas de campo en el año 2007. En total el muestreo de campo se extendió durante 60 días, en el cual 52 días fueron trabajo efectivo en la zona de estudio y ocho se emplearon para desplazarse al sitio de muestreo.
4. Se aplicaron encuestas dirigidas a los pobladores de la región con el fin de obtener información sobre las especies de fauna silvestre que invadieron áreas intervenidas después del llenado del embalse. Para este fin, se realizó una salida de campo en el segundo período de lluvias durante tres días donde se encuestó a díez familias por vereda. Las encuestas fueron realizadas por seis personas en las veredas ubicadas alrededor de la Central y sugeridas en estudios anteriores en la zona.

12 familias de Anfibios: Aromobatidae, Brachycephalidae, Bufonidae, Centrolenidae, Dendrobatidae, Hylidae, Leiuperidae, Leptodactylidae, Microhylidae, Plethodontidae, Ranidae, Rhinatrematidae. El 94% de los registros están identificados hasta especie.

1. Aromobatidae
   rank: family
2. Brachycephalidae
   rank: family
3. Bufonidae
   rank: family
4. Centrolenidae
   rank: family
5. Dendrobatidae
   rank: family
6. Hylidae
   rank: family
7. Leiuperidae
   rank: family
8. Leptodactylidae
   rank: family
9. Microhylidae
   rank: family
10. Plethodontidae
    rank: family
11. Ranidae
    rank: family
12. Rhinatrematidae
    rank: family

46 familias de aves: Accipitridae, Alcedinidae, Anhingidae, Apodidae, Ardeidae, Bucconidae, Capitonidae, Caprimulgidae, Cathartidae, Coerebidae, Columbidae, Corvidae, Cotingidae, Cracidae, Cuculidae, Dendrocolaptidae, Falconidae, Formicariidae, Fringillidae, Furnariidae, Hirundinidae, Icteridae, Mimidae, Momotidae, Nyctibiidae, Odonthophoridae, Pandionidae, Parulidae, Phalacrocoracidae, Picidae, Pipridae, Psittacidae, Rallidae, Ramphastidae, Scolopacidae, Strigidae, Tersinidae, Thamnophilidae, Thraupidae, Tinamidae, Trochilidae, Troglodytidae, Trogonidae, Turdidae, Tyrannidae, Vireonidae. El 100% de los registros están identificados hasta especie.

1. Accipitridae
   rank: family
2. Alcedinidae
   rank: family
3. Anhingidae
   rank: family
4. Apodidae
   rank: family
5. Ardeidae
   rank: family
6. Bucconidae
   rank: family
7. Capitonidae
   rank: family
8. Caprimulgidae
   rank: family
9. Cathartidae
   rank: family
10. Coerebidae
    rank: family
11. Columbidae
    rank: family
12. Corvidae
    rank: family
13. Cotingidae
    rank: family
14. Cracidae
    rank: family
15. Cuculidae
    rank: family
16. Dendrocolaptidae
    rank: family
17. Falconidae
    rank: family
18. Formicariidae
    rank: family
19. Fringillidae
    rank: family
20. Furnariidae
    rank: family
21. Hirundinidae
    rank: family
22. Icteridae
    rank: family
23. Mimidae
    rank: family
24. Momotidae
    rank: family
25. Nyctibiidae
    rank: family
26. Odonthophoridae
    rank: family
27. Pandionidae
    rank: family
28. Parulidae
    rank: family
29. Phalacrocoracidae
    rank: family
30. Picidae
    rank: family
31. Pipridae
    rank: family
32. Psittacidae
    rank: family
33. Rallidae
    rank: family
34. Ramphastidae
    rank: family
35. Scolopacidae
    rank: family
36. Strigidae
    rank: family
37. Tersinidae
    rank: family
38. Thamnophilidae
    rank: family
39. Thraupidae
    rank: family
40. Tinamidae
    rank: family
41. Trochilidae
    rank: family
42. Troglodytidae
    rank: family
43. Trogonidae
    rank: family
44. Turdidae
    rank: family
45. Tyrannidae
    rank: family
46. Vireonidae
    rank: family

19 familias de mamiferos: Aotidae, Atelidae, Canidae, Cebidae, Cricetidae, Cuniculidae, Dasypodidae, Dasyproctidae, Didelphidae, Echymidae, Emballonuridae, Erethizontidae, Felidae, Mustelidae, Phyllostomidae, Procyonidae, Sciuridae, Tayassuidae, Vespertilionidae. El 94% de los registros están identificados hasta especie.

1. Aotidae
   rank: family
2. Atelidae
   rank: family
3. Canidae
   rank: family
4. Cebidae
   rank: family
5. Cricetidae
   rank: family
6. Cuniculidae
   rank: family
7. Dasypodidae
   rank: family
8. Dasyproctidae
   rank: family
9. Didelphidae
   rank: family
10. Echymidae
    rank: family
11. Emballonuridae
    rank: family
12. Erethizontidae
    rank: family
13. Felidae
    rank: family
14. Mustelidae
    rank: family
15. Phyllostomidae
    rank: family
16. Procyonidae
    rank: family
17. Sciuridae
    rank: family
18. Tayassuidae
    rank: family
19. Vespertilionidae
    rank: family

12 familias de reptiles: Amphisbaenidae, Colubridae, Corythophanidae, Corytophanidae, Gekkonidae, Gymnophtalmidae, Gymnothalmidae, Iguanidae, Kinosternidae, Polychrotidae, Teiidae, Viperidae. El 81% de los registros están identificados hasta especie.

1. Amphisbaenidae
   rank: family
2. Colubridae
   rank: family
3. Corythophanidae
   rank: family
4. Corytophanidae
   rank: family
5. Gekkonidae
   rank: family
6. Gymnophtalmidae
   rank: family
7. Gymnothalmidae
   rank: family
8. Iguanidae
   rank: family
9. Kinosternidae
   rank: family
10. Polychrotidae
    rank: family
11. Teiidae
    rank: family
12. Viperidae
    rank: family

Departamento de Caldas, municipios de Norcasia, Samaná y Victoria. Embalse Amaní.