Estructura Ecológica de la Subregión Norte de Caldas, Contrato para actividades científicas y tecnológicas No. 222-2018 entre Corpocaldas y WCS

Study Extent

La Subregión Norte del departamento de Caldas abarca aproximadamente 127000 ha, y comprende los municipios de Aguadas, Pácora, Salamina y Aranzazu. Limita al norte con el departamento de Antioquia, y con las subregiones de Caldas Centro sur al sur, Alto Oriente al oriente, y Alto Occidente al occidente. Para la selección de los sitios de muestreo se consideraron, entre otros, criterios de representatividad, conectividad y oportunidad de manejo de coberturas y ecosistemas. De esta manera, y teniendo en cuenta el amplio gradiente altitudinal de la subregión, se seleccionaron 12 sitios de muestreo que abarcaran los cuatro municipios y los diferentes pisos térmicos presentes en la Subregión Norte, clasificándolos para su análisis como zona baja (Cálido: < 1500 msnm), zona media (Templado: entre 1500 y 2500 msnm), y zona alta (Frio y paramuno: > 2500 msnm).

Sampling

Para cada grupo de estudio se realizaron inventarios con metodologías estandarizadas durante 31 días efectivos de campo. La información obtenida en campo fue complementada con información secundaria compilada de registros de los grupos de interés en el área de estudio, con el objetivo de prospectar la diversidad biológica presente en la Subregión Norte, y cada uno de los municipios que la conforman. Todas las especies registradas fueron clasificadas según su importancia por grado de endemismo, y categoría de amenaza nacional y mundial (Resolución 1912 2017; IUCN 2019)

Quality Control

Ajuste de vocabulario controlado en elementos de registro: type y basisOfRecord de acuerdo a la naturaleza de los datos.

Method steps

1. AVES En cada localidad de muestreo se realizaron recorridos de observación de entre 2.5 y 5 km, y captura con entre 6 y 8 redes de niebla (12 x 2.5 x 12 mm) revisadas por dos expertos cada 15 minutos (Ralph et al. 1993). Ambas metodologías se aplicaron cuando fue posible durante dos días por localidad en las mañanas entre 6:00 y 11:00, y en las tardes entre 13:00 y 17:00 pm. En todos los casos, cuando fue posible se tomaron fotos de los individuos registrados para validar la identificación de los mismos mediante las principales guías de identificación de aves para Colombia (Hilty & Brown 1986; McMullan et al. 2010; Ayerbe-Quiñones 2018). Durante los recorridos de observación se tuvieron en cuenta eventos visuales y auditivos a distancias menores a 25 metros, anotando abundancias y coberturas asociadas a los registros. A los individuos capturados en redes de niebla se les registró sexo, masa corporal, ancho y altura de pico, longitud de culmen total, longitud de tarso, longitud de ala cerrada, longitud de cola, longitud de hallux, e índice de Kipp, además de observaciones si era el caso, de muda o reproducción. Adicional a esto, se anotaron los registros ocasionales de especies encontradas fuera del diseño de muestreo, como aquellos encontrados entre puntos de muestreo, u observados mientras se operaban las redes de niebla.
2. ANFIBIOS Y REPTILES Se realizaron muestreos diurnos (entre 08:00 am y 15:00 pm) y nocturnos (entre 18:30 y 23:00 pm), mediante las metodologías de transectos de inspección por encuentro visual y búsqueda activa en recorridos libres (Rodda et al. 2001). Se establecieron 14 transectos de 100 x 4 metros ubicados temporalmente en cada localidad de muestreo. Los transectos de observación consistieron en la realización de caminatas lentas con visión a una altura aproximada de 2.5 metros sobre el suelo, siguiendo cada una de las coberturas vegetales reconocidas dentro del área de estudio, y detectando cuidadosamente las especies de reptiles y anfibios presentes en la zona (Rodda et al. 2001; Cáceres-Andrade & Urbina-Cardona 2009). Por otro lado, se realizaron recorridos libres de búsqueda activa sin restricciones abarcando la mayor cantidad de micro hábitats posibles entre la vegetación, la hojarasca, troncos de árboles en pie, troncos derribados, troncos en descomposición, piedras, y charcas, entre otros. Los animales fueron capturados manualmente, teniendo especial cuidado con los individuos pequeños para no lastimarlos. Los anfibios se mantuvieron en bolsas plásticas previamente humedecidas con vegetación en su interior. A cada individuo encontrado y capturado se le tomó registro de longitud rostro-cloaca (LRC) y peso en gramos (g). A parte de esto, se registró el microhábitat específico donde cada individuo fue hallado, clasificándolo como: suelo desnudo, hojarasca, roca, tronco, rama, hoja, charca, o quebrada. Algunos ejemplares de especies poco conocidas o de difícil identificación en campo fueron colectadas siguiendo el protocolo de eutanización, fijación y preservación propuesto por Cortes et al. (2006). El sacrificio de anfibios se realizó mediante la aplicación de un anestésico cutáneo sobre el cuerpo de los animales (Lidocaína 2%). Posteriormente, los individuos colectados fueron fijados con formaldehído (Formol 10%) y preservados en etanol al 70%. De todas las especies se tomaron muestras de tejido para enriquecer el banco de tejidos. Los ejemplares colectados fueron depositados en la colección herpetológica del Museo de Historia Natural de la Universidad de Caldas (MHN-UC).
3. MAMIFEROS En todas las localidades de muestreo se instalaron equipos que permitieran la captura de mamíferos pequeños voladores y no voladores. Además, se registraron eventos de rastros y encuentros ocasionales de mamíferos medianos y grandes. Para el caso de mamíferos voladores se buscó instalar por lo menos 60 metros lineales de redes de niebla en cada localidad de muestreo, según las condiciones de clima y terreno. Las redes se abrieron entre las 17:30 y las 23:00 horas, y fueron revisadas por dos expertos que las revisaron cada 15 o 30 minutos, dependiendo del éxito de captura por punto de muestreo. Los individuos capturados fueron medidos, fotografiados y determinados hasta el nivel taxonómico más específico posible mediante el uso de claves taxonómicas especializadas (Gardner 2008; Díaz et al. 2016). Cuando fue necesario para su identificación, los individuos fueron colectados y depositados en la colección de mamíferos de la Universidad de Caldas (MHN-UC). Los especímenes colectados se prepararon en campo, con ejemplares cuando fue posible de macho y hembra en seco, y macho y hembra en líquido por especie a determinar. A cada individuo se le realizo el respectivo protocolo biométrico considerando medidas de longitud total (LT), longitud cola (LC), longitud oreja (LO), Longitud trago (TR), longitud de pata (LP), longitud tibia pata (TP), longitud calcáneo (CAL), longitud uropatagio (URO), longitud de antebrazo (AB) y peso (g). En cuanto a mamíferos pequeños no voladores, se dispuso entre 28 y 30 trampas Sherman por localidad de muestreo (Tabla 6), cebadas con tres diferentes mezclas para aumentar la probabilidad de captura: 1. Mezcla de avena en hojuelas, mantequilla de maní y esencia de banano 2. Cuchuco de maíz y sardina 3. Banano, Mango Dichas trampas se instalaron a nivel del suelo en áreas con vegetación de tipo boscoso, separadas entre sí por aproximadamente 10 metros y cubiertas con hojarasca para incrementar el éxito de captura. Estas trampas se revisaron diariamente en las horas de la mañana. Los individuos capturados fueron pesados, sexados e identificados a través de claves especializadas (Patton et al. 2015), se les tomó registro fotográfico y medidas morfométricas estándar de Longitud de la cola, longitud del cuerpo, longitud pata delantera y trasera, longitud oreja y longitud hocico. Para la identificación de los individuos capturados y los rastros encontrados se utilizaron claves taxonómicas, guías de campo, manuales y artículos científicos para corroborar su identificacion (Tirira 2007; Gardner 2008; Defler 2010; Aranda Sanchez 2012; Solari et al. 2013; Patton et al. 2015; Díaz et al. 2016; Ramírez-Chaves et al. 2016). A cada individuo capturado se le realizó el respectivo protocolo biométrico, que consiste en: longitud total (LT), longitud cola (LC), longitud oreja (LO), Longitud trago (TR), longitud de pata (LP), longitud tibia pata (TP), longitud de antebrazo (AB) y peso. Las medidas se registraron en milímetros (mm) y gramos (g) respectivamente. Los especímenes colectados se prepararon en campo, cuando fue posible se colectó macho y hembra en seco y macho y hembra en líquido por especie, además de colectarse los individuos de los cuales se tenía duda sobre su identidad taxonómica. Los especímenes se depositaron en la colección de mamíferos de la Universidad de Caldas con el número de catálogo MHNUCA 2127 – MHNUCA 2193.
4. ABEJAS Se establecieron transectos lineales de 150 m de largo por 4 m de ancho para la captura de abejas silvestres, los cuales estuvieron ubicados principalmente en bordes e interior de bosques. Los muestreos se realizaron mediante la combinación de tres métodos directos e indirectos que según estudios previos aumentan la efectividad de captura en ecosistemas tropicales (Smith-pardo 2007). Dichos métodos fueron: 1) Recorridos de captura directa con red entomológica (jama), y trampas Van Someren Rydon (usando como cebo pescado en descomposición) y de esencias. La mayor intensidad del muestreo se concentró en la ejecución de jameos en los transectos dispuestos en el borde e interior del bosque. El primer método constó de dos partes, una en la que se realizó un jameo por día durante un período de 60 minutos a lo largo de los transectos, y otra, en la que a través de recorridos esporádicos entre las 8:00 y las 16:00 se capturaron abejas que pudieran aparecer en encuentros ocasionales no sólo en los transectos sino también en los alrededores cercanos, recorriendo en promedio 4 o 5 km dentro de los polígonos de muestreo. En el segundo método se ubicaron dos trampas Van Someren Rydon en cada uno de los transectos, ubicadas una a 50 y otra a 100 m respectivamente. Para el tercer método se colocaron 6 trampas de esencias por transecto, tres en cada extremo (0, 150 y 300 m del inicio del transecto), usando como atrayente tres tipos de esencias: eucaliptol, salicilato de metilo y eugenol. Todas las trampas se instalaron en horas de la mañana y se recogieron en la tarde. Los especímenes capturados con trampas Van Someren Rydon fueron almacenados provisionalmente en viales con alcohol al 96%, mientras que las abejas capturadas con jama o trampas de esencias fueron sacrificadas utilizando una cámara letal que contenía acetato de etilo, y posterior al sacrificio conservado en seco. Posteriormente los individuos fueron montados e identificados hasta el nivel taxonómico más cercano a especie, con ayuda de estereoscopio en el laboratorio de la Universidad del Quindío. El material colectado se incorporó en la colección entomológica de la Universidad de Caldas (MHN-UC)

Contiene registros del Abejas, Aves, Botánica, Herpetos, Limnología y Mastozoología

1. Arremon assimilis
   rank: species
2. Ochthoeca fumicolor
   rank: species
3. Pyrrhomyias cinnamomeus
   rank: species
4. Grallaria ruficapilla
   rank: species
5. Colibri coruscans
   rank: species
6. Zonotrichia capensis
   rank: species
7. Turdus fuscater
   rank: species
8. Diglossa albilatera
   rank: species
9. Geranoaetus albicaudatus
   rank: species
10. Synallaxis azarae
    rank: species
11. Coeligena torquata
    rank: species
12. Heliangelus exortis
    rank: species
13. Colibri cyanotus
    rank: species
14. Caracara cheriway
    rank: species
15. Systellura longirostris
    rank: species
16. Cyanocorax yncas
17. Myiarchus tuberculifer
18. Lepidocolaptes lacrymiger
19. Colaptes rivolii
20. Tangara vassorii
21. Adelomyia melanogenys
22. Zimmerius chrysops
23. Vireo olivaceus
24. Myioborus miniatus
25. Atlapetes schistaceus
26. Diglossa cyanea
27. Anisognathus somptuosus
28. Myioborus ornatus
29. Myadestes ralloides
30. Tangara nigroviridis
31. Andigena nigrirostris
32. Patagioenas fasciata
33. Doryfera ludovicae
34. Contopus virens
35. Nothocercus julius
36. Rupornis magnirostris
37. Trogon personatus
38. Coragyps atratus
39. Pharomachrus auriceps
40. Aulacorhynchus prasinus
41. Chlorostilbon melanorhynchus
42. Ochthoeca cinnamomeiventris
43. Chlorospingus flavopectus
44. Pachyramphus versicolor
45. Sporathraupis cyanocephala
46. Conirostrum albifrons
47. Henicorhina leucophrys
48. Anisognathus lacrymosus
49. Grallaria quitensis
50. Catamenia inornata
51. Vanellus chilensis
52. Anisognathus igniventris
53. Diglossa humeralis
54. Buthraupis montana
55. Orochelidon murina
56. Metallura tyrianthina
57. Penelope montagnii
58. Eriocnemis derbyi
59. Metallura williami
60. Cnemathraupis eximia
61. Mecocerculus leucophrys
62. Leptosittaca branickii
63. Ampelion rubrocristatus
64. Ramphomicron microrhynchum
65. Pseudospingus verticalis
66. Thlypopsis superciliaris
67. Troglodytes aedon
68. Andigena hypoglauca
69. Aglaeactis cupripennis
70. Grallaria rufula
71. Pipreola arcuata
72. Microcerculus marginatus
73. Atlapetes pallidinucha
74. Spinus magellanicus
75. Ochthoeca frontalis
76. Conirostrum sitticolor
77. Geospizopsis unicolor
78. Setophaga petechia
79. Grallaria nuchalis
80. Pygochelidon cyanoleuca
81. Synallaxis albescens
82. Cyanolyca armillata
83. Sayornis nigricans
84. Cinclus leucocephalus
85. Momotus aequatorialis
86. Empidonax virescens
87. Tyrannus melancholicus
88. Atlapetes latinuchus
89. Gallinago
90. Contopus fumigatus
91. Ciccaba albitarsis
92. Hemitriccus granadensis
93. Myiarchus cephalotes
94. Myiothlypis coronata
95. Cinnycerthia unirufa
96. Aglaiocercus kingii
97. Sturnella magna
98. Patagioenas subvinacea
99. Sericossypha albocristata
100. Myiothlypis nigrocristata
101. Megascops choliba
102. Eriocnemis vestita
103. Boissonneaua flavescens
104. Mionectes striaticollis
105. Elaenia frantzii
106. Phaethornis syrmatophorus
107. Haplophaedia aureliae
108. Coeligena coeligena
109. Chamaepetes goudotii
110. Geranoaetus polyosoma
111. Cacicus chrysonotus
112. Basileuterus tristriatus
113. Turdus ignobilis
114. Melanerpes formicivorus
115. Cathartes aura
116. Tangara arthus
117. Ortalis columbiana
118. Nyctibius griseus
119. Syndactyla subalaris
120. Bubulcus ibis
121. Saucerottia saucerottei
122. Atlapetes albinucha
123. Uranomitra franciae
124. Sporophila nigricollis
125. Ramphocelus flammigerus
126. Tiaris olivaceus
127. Zenaida auriculata
128. Machetornis rixosa
129. Crotophaga ani
130. Tangara gyrola
131. Stilpnia heinei
132. Piranga rubra
133. Stilpnia vitriolina
134. Sicalis flaveola
135. Psarocolius angustifrons
136. Chlorophanes spiza
137. Stelgidopteryx ruficollis
138. Ardea alba
139. Thraupis palmarum
140. Volatinia jacarina
141. Streptoprocne zonaris
142. Spinus psaltria
143. Myiozetetes cayanensis
144. Thraupis episcopus
145. Patagioenas cayennensis
146. Icterus chrysater
147. Dryocopus lineatus
148. Piaya cayana
149. Columbina talpacoti
150. Cyanocorax affinis
151. Milvago chimachima
152. Saltator atripennis
153. Pitangus sulphuratus
154. Aulacorhynchus haematopygus
155. Saltator striatipectus
156. Islerothraupis luctuosa
157. Molothrus bonariensis
158. Thamnophilus multistriatus
159. Anthracothorax nigricollis
160. Coereba flaveola
161. Stilpnia cyanicollis
162. Phaethornis guy
163. Elaenia flavogaster
164. Pionus menstruus
165. Amazilia tzacatl
166. Pheugopedius mystacalis
167. Chordeiles minor
168. Euphonia laniirostris
169. Forpus conspicillatus
170. Melanerpes rubricapillus
171. Pyrocephalus rubinus
172. Tapera naevia
173. Sporophila minuta
174. Basileuterus rufifrons
175. Todirostrum cinereum
176. Pachyramphus rufus
177. Phaeomyias murina
178. Taraba major
179. Chalybura buffonii
180. Setophaga castanea
181. Myiothlypis fulvicauda
182. Pheucticus ludovicianus
183. Thamnophilus atrinucha
184. Ramphocelus dimidiatus
185. Phimosus infuscatus
186. Camptostoma obsoletum
187. Crotophaga sulcirostris
188. Basileuterus culicivorus
189. Catharus ustulatus
190. Pionus chalcopterus
191. Arremonops conirostris
192. Hemithraupis guira
193. Poecilotriccus sylvia
194. Sporophila schistacea
195. Phalacrocorax brasilianus
196. Egretta thula
197. Chaetocercus mulsant
198. Dendroplex picus
199. Picumnus granadensis
200. Chloroceryle americana
201. Myiodynastes maculatus
202. Thripadectes holostictus
203. Parkesia noveboracensis
204. Ara macao
205. Mionectes olivaceus
206. Tolmomyias sulphurescens
207. Lepidocolaptes souleyetii
208. Mionectes oleagineus
209. Polioptila plumbea
210. Myiopagis viridicata
211. Pulsatrix perspicillata
212. Henicorhina leucosticta
213. Vireo flavoviridis
214. Pachysylvia semibrunnea
215. Pheugopedius sclateri
216. Dendrocincla fuliginosa
217. Psittacara wagleri
218. Piranga olivacea
219. Sporophila crassirostris
220. Myiodynastes luteiventris
221. Tachyphonus rufus
222. Falco rufigularis
223. Cercomacroides parkeri
224. Myiarchus
225. Sicalis citrina
226. Falco sparverius
227. Cardellina canadensis
228. Anolis auratus
229. Leucostethus brachistriatus
230. Hyalinobatrachium fleischmanni
231. Basiliscus basiliscus
232. Ameiva
233. Gonatodes albogularis
234. Boana pugnax
235. Trachycephalus typhonius
236. Pristimantis gaigei
237. Oxyrhopus petolarius
238. Rhinella horribilis
239. Holcosus
240. Leptophis ahaetulla
241. Dendropsophus columbianus
242. Lithobates catesbeianus
243. Oxybelis aeneus
244. Pristimantis thectopternus
245. Hyloscirtus larinopygion
246. Pristimantis
247. Bolitoglossa
248. Pristimantis uranobates
249. Osornophryne percrassa
250. Ptistimantis stictus
251. Centrolene buckleyi
252. Pristimantis actinolaimus
253. Pristimantis boulengeri
254. Pristimantis scoloblepharus
255. Pristimantis parectatus
256. Pholidobolus vertebralis
257. Anolis antonii
258. Centrolene savagei
259. Atractus lehmanni
260. Erythrolamprus epinephelus
261. Anolis heterodermus
262. Pristimantis achatinus
263. Clelia equatoriana
264. Leucostethus fraterdanieli
265. Bombus rubicundus
266. Bombus funebris
267. Bombus hortulanus
268. Bombus pullatus
269. Bombus atratus
270. Bombus robustus
271. Eulaema cingulata
272. Eufriesea flaviventris
273. Exaerete smaragdina
274. Euglossa
275. Parapartamona
276. Parapartamona caliensis
277. Partamona
278. Partamona peckolti
279. Trigona fulviventris
280. Trigona amalthea
281. Paratrigona eutaeniata
282. Plebeia
283. Tetragonisca angustula
284. Megachilidae
285. Apis mellifera
286. Bombus malaleucus
287. Bombus excellens
288. Tetragona perangulata
289. Trigona
290. Paratrigona
291. Paratetrapedia
292. Shchwarzula
293. Scaptotrigona
294. Plebeia franki
295. Nannotigona
296. Melipona nigrescens
297. Neocorynura
298. Ceratina
299. Caenaugochlora
300. Pseudoaugochlora
301. Augochloropsis
302. Hylaeus
303. Xylocopa lachnea
304. Eufriesea nigrescens
305. Centris
306. Epicharis
307. Colletidae
308. Trigonisca
309. Glossiphoniidae
310. Actinedida
311. Arachnida
312. Isotomidae
313. Cylloepus
314. Heterelmis
315. Neoelmis
316. Stenhelmoides
317. Anchytarsus
318. Chironominae
319. Polypedilum
320. Lopescladius
321. Dolichopodidae
322. Simulium
323. Haplohyphes
324. Leptohyphes
325. Tricorythodes
326. Farrodes
327. Thraulodes
328. Mesoveloidea
329. Cryphocricos
330. Rhagovelia
331. Coenagrionidae
332. Gomphidae
333. Libellulidae
334. Phylloicus
335. Atopsyche
336. Smicridea
337. Nectopsyche
338. Wormaldia
339. Pseudothelphusidae
340. Dugesia
341. Macrelmis
342. Microcylloepus
343. Disersus
344. Psephenops
345. Cricotopus
346. Pentaneura
347. Dixella
348. Hexatoma
349. Andesiops
350. Baetodes
351. Camelobaetidius
352. Pelocoris
353. Corydalus
354. Hetaerina
355. Argia
356. Anacroneuria
357. Helicopsyche
358. Leptonema
359. Oecetis
360. Physa
361. Alluaudomyia
362. Stenochironomus
363. Odontomyia
364. Glossosomatidae
365. Naidinae
366. Phanocerus
367. Tanytarsus
368. Clognia
369. Maruina
370. Limonia
371. Dysticidae
372. Hydrophilidae
373. Scirtes
374. Mesovelia
375. Amnicola
376. Lymnaecia
377. Hemerodromia
378. Molophilus
379. Lumbriculus
380. Culicidae
381. Hydroptilidae
382. Collembola
383. Carabidae
384. Chrysomelidae
385. Rhantus
386. Staphylinidae
387. Tipula
388. Tipulidae
389. Osmylidae
390. Banyallarga
391. Triplectides
392. Elodes
393. Mayobaetis
394. Atanatolica
395. Depanotrema
396. Lumbricidae
397. Erpobdellidae
398. Hidracnidae
399. Austrelmis
400. Hydrophilidae
401. Blepharoceridae
402. Podonominae
403. Limnophora
404. Gigantodax
405. Tabanus
406. Baetidae
407. Lepidoptera
408. Contulma
409. Anomalocosmoecus
410. Hyalella
411. Neochordodes
412. Dixidae
413. Psychodidae
414. Aeshnidae
415. Pisidium
416. Notelmis
417. Marilia
418. Austrolimnius
419. Larainae
420. Neoatriplectides
421. Hydraena
422. Onychelmis
423. Gerridae
424. Dryopidae
425. Lutrochus
426. Polythore
427. Chironectes minimus
428. Marmosa demerarae
429. Neacomys tenuipes
430. Zygodontomys brevicauda
431. Sciurus pucheranii
432. Cuniculus taczanowskii
433. Dasyprocta punctata
434. Potos flavus
435. Leopardus pardalis
436. Cerdocyon thous
437. Dasypus novemcinctus
438. Alouatta seniculus
439. Aotus lemurinus
440. Carollia perspicillata
441. Carollia castanea
442. Desmodus rotundus
443. Sturnira erythromos
444. Sturnira bogotensis
445. Platyrrhinus helleri
446. Glossophaga soricina
447. Artibeus lituratus
448. Myotis riparius
449. Lonchophylla
450. Dermanura phaeotis
451. Phyllostomus discolor
452. Choeroniscus minor
453. Nephelomys childi
454. Thomasomys
455. Myotis keaysi
456. Eptesicus fuscus miradorensis
457. Cryptotis medellinius
458. Eptesicus chiriquinus
459. Handleyomys intectus
460. Sturnira bidens
461. Eptesicus andinus
462. Anoura peruana
463. Puma concolor
464. Nasua nasua
465. Proechimys
466. Lasiurus blossevillii
467. Oecomys
468. Anoura caudifer
469. Dermanura
470. Platyrrhinus albericoi
471. Platyrrhinus
472. Enchisthenes hartii
473. Glossophaga
474. Molossus molossus
475. Ruellia
476. Annona rensoniana
477. Pereskia bleo
478. Callicarpa acuminata
479. Zanthoxylum
480. Maripa
481. Trichillia
482. Maranta
483. Cordia
484. Nectandra
485. Casearia
486. Asteraceae
487. Eucharis caucana
488. Aphelandra
489. Justicia
490. Cleome
491. Capsicum
492. Lamiaceae
493. Monstera obliqua
494. Zanthoxylum schreberi
495. Byrsonima crassifolia
496. Fabaceae
497. Solanum
498. Vanilla
499. Warszewiczia coccinea
500. Anthurium
501. Clusia
502. Passiflora
503. Malpighiaceae
504. Ouratea
505. Serjania
506. Malvaceae
507. Magnoliopsida
508. Brosimum
509. Pachira speciosa
510. Brunellia boqueronensis
511. Mutisia grandiflora
512. Schultesianthus coriaceus
513. Eugenia
514. Meriania
515. Orchidaceae
516. Thibaudia
517. Roupala monosperma
518. Passiflora cumbalensis
519. Passiflora antioquiensis
520. Panopsis yolombo
521. Bejaria
522. Escallonia paniculata
523. Monnina
524. Clethra fagifolia
525. Gaiadendron punctatum
526. Ternstroemia meridionalis
527. Myrcianthes
528. Barnadesia spinosa
529. Lauraceae
530. Myrtaceae
531. Primulaceae
532. Beilschmiedia tovarensis
533. Quercus humboldtii
534. Lozania mutisiana
535. Ocotea
536. Bromeliaceae
537. Viburnum pichinchense
538. Tibouchina grossa
539. Pernettya prostrata
540. Saracha quitensis
541. Axinaea macrophylla
542. Puya
543. Senecio formosus
544. Baccharis tricuneata
545. Rosaceae
546. Baccharis revoluta
547. Halenia elata
548. Pentacalia vaccinioides
549. Hypericum
550. Elleanthus
551. Geissanthus quindiensis
552. Clethra rugosa
553. Passiflora kumandayi
554. Chusquea
555. Siphocampylus
556. Centropogon
557. Aegiphila odontophylla
558. Telipogon
559. Tristerix secundus
560. Salpichroa tristis
561. Vaccinium floribundum
562. Disterigma
563. Miconia
564. Miconia chlorocarpa
565. Weinmannia
566. Polylepis sericea
567. Hesperomeles obtusifolia
568. Pentacalia
569. Maytenus
570. Ericaceae
571. Diplostephium revolutum
572. Gaultheria
573. Siparuna
574. Lasiocephalus
575. Ugni
576. Clethra ovalifolia
577. Bomarea
578. Saurauia
579. Aequatorium
580. Lycianthes acutifolia
581. Begonia
582. Diplostephium pittieri
583. Brunellia
584. Ruagea hirsuta
585. Psychotria
586. Besleria
587. Miconia stipularis
588. Rubiaceae
589. Peperomia
590. Piper
591. Columnea
592. Cyperaceae
593. Glossoloma
594. Asplundia sp
595. Miconia asperrima
596. Turpinia occidentalis
597. Brunellia subsessilis
598. Hieronyma macrocarpa
599. Miconia wurdackii
600. Myrcianthes rhopaloides
601. Phyllanthus
602. Meriania nobilis Triana
603. Saurauia chiliantha
604. Oreopanax
605. Mollinedia ovata
606. Acalypha platyphylla
607. Alloplectus weirii
608. Hoffmannia
609. Vasconcellea microcarpa
610. Cuatresia riparia
611. Markea sturmii
612. Notopleura
613. Pilea
614. Palicourea
615. Lycianthes
616. Piper calceolarium
617. Pipersp.
618. Chrysochlamys
619. Hydrangea
620. Blackea
621. Ilex
622. Drimys
623. Weinmannia pubescens
624. Drymonia
625. Miconia antioquiensis
626. Corynaea crassa
627. Equisetopsida sp.
628. Peperomia mollis
629. Ladenbergia
630. Morella pubescens
631. Monocheatum
632. Sphyrospermum
633. Baccharis latifolia
634. Meriania tomentosa
635. Hedyosmum racemosum
636. Serpocaulon levigatum
637. Tibouchina lepidota
638. Miconia psychrophila
639. Weinmannia balbisiana
640. Santalaceae
641. Manettia
642. Palicourea angustifolia
643. Baccharis
644. Aegiphila
645. Clethra fagifolia Var. bicolor
646. Geonoma
647. Geissanthus
648. Picramnia sphaerocarpa
649. Kohleria inaequalis
650. Palicourea thyrsiflora
651. Anthurium scandens
652. Dendropanax caucanus
653. Orchidaceae
654. Gonolobus
655. Aegiphila alba
656. Phytolacca
657. Piper umbellatum
658. Tropaeolum
659. Clidemia ciliata
660. Macrocnemum roseum
661. Arachnothryx euryphylla
662. Miconia theizans
663. Miconia caudata
664. Cavendishia
665. Myrsine coriacea
666. Viburnum toronis
667. Guettarda
668. Solanum aturense
669. Ficus
670. Coccoloba
671. Senna
672. Clibadium surinamense
673. Passiflora cisnana

La Subregión Norte del departamento de Caldas abarca aproximadamente 127000 ha, y comprende los municipios de Aguadas, Pácora, Salamina y Aranzazu. Limita al norte con el departamento de Antioquia, y con las subregiones de Caldas Centro sur al sur, Alto Oriente al oriente, y Alto Occidente al occidente. Se ubica al norte de la cordillera de los Andes, sobre las estribaciones occidentales de la cordillera central entre los ríos Arma al nororiente y Cauca hasta el rio pozo al noroccidente; siguiendo al occidente por las quebradas Calentaderos, San Laurencio, y por la Cuchilla del Yarumo. Al suroccidente la subregión está delimitada por las quebradas Barro Blanco y el Oso, hasta su confluencia con las quebradas Chupaderos y Los Órganos en dirección a la quebrada Dantas y su desembocadura en la quebrada la Honda hasta su congruencia con la quebrada Femenina, y aguas arriba de esta hasta su nacimiento en dirección a la confluencia de las quebradas Muelas y Sardinas. Al sur la Subregión Norte llega hasta la quebrada Sardinas, y las Cuchillas Corozal y El Cardal; y al suroriente limita con las cumbres de las subcuencas del rio San Félix y Pozo Maiba hasta el nacimiento del rio Arma en la quebrada Reyes. Hace parte en su totalidad de la cuenca del rio Cauca, siendo el 35% de su territorio correspondiente a la subcuenca del rio Arma, que comparte con la subregión Alto Oriente y el departamento de Antioquia. Mientras que el 65% de su territorio pertenece a la subcuenca del rio Tapias y otros directos al Cauca, que comparte con las subregiones Centro Sur, Alto Occidente, y Alto Oriente. La Subregión Norte comprende un amplio gradiente altitudinal que va desde los 550 msnm en el cañón del rio Cauca hasta los 3750 msnm en las cumbres de la cordillera central. Por lo que, cuenta con todos los pisos térmicos de la clasificación de Caldas, y diferentes tipos de biomas como son los Zonobiomas Húmedo Tropicales del Cauca, Hidrobiomas y Orobiomas Andinos y Subandinos Del Cauca y la Cordillera Central, y el Orobioma de Paramo de la Cordillera Central