Caracterización de grupos hidrobiológicos en Área de Perforación Exploratoria Nyctibius, municipio de Puerto de Asís, Putumayo

Study Extent

El Área de influencia Físico-Biótica del Área de Perforación Exploratoria Nyctibius presenta un área de 4098,77 ha.

Sampling

Se realizó la caracterización de las comunidades hidrobiológicas, presentes en los cuerpos de agua analizados en las corrientes susceptibles de intervención por el proyecto, así como de algunos sistemas lénticos presentes en el área de estudio definida para el APE Nyctibius. En el área de estudio se realizaron muestreos de Perifiton, Fitoplancton, Zooplancton, Macroinvertebrados Bentónicos y Macroinvertebrados asociados a Macrófitas, en las corrientes más representativas dentro del área de influencia Físico – Biótica. Las metodologías utilizadas para toma de muestras en campo y el análisis en laboratorio se basó en el manejo de la metodología descrita por el Standard Methods edición 23 (APHA-AWWA-WPCF, 2017) . Dicho monitoreo se estableció en 45 puntos de muestreo, en cuerpos de agua ubicados en el área de influencia, durante dos periodos climáticos distintos (temporada seca y lluviosa); debido a que durante el monitoreo en temporada seca se encontraron puntos secos, se adicionan ocho puntos de monitoreo en una tercera campaña realizada entre el 10 y 11 de febrero de 2022. En ese sentido, el primer muestreo fue realizado entre los días 17 de agosto y 1 de septiembre, el segundo entre los días 8 y 25 de noviembre del año 2021 y el tercero entre los días 10 y 11 de febrero de 2022.

Method steps

1. Medidas abióticas: En cada sitio de monitoreo se procedió inicialmente a registrar las características propias del medio como el tipo de sistema, ancho, profundidad, color del agua, corriente, sustrato, vegetación circundante y todo tipo de posibles causantes de contaminación o impactos evidentes sobre el ecosistema en cuestión. Posteriormente, siguiendo la metodología propuesta anteriormente y basándose en el procedimiento I&E-ENVI-OPE-P-15 se realizó la toma de muestras del material biológico.
2. Perifiton: Para efectos del estudio biológico de esta comunidad, se escogieron varios sustratos (roca, hoja y tronco), sumergidos o que estuvieran en constante contacto con el agua, para raspar la biopelícula adherida a ellos mediante un cepillo de dientes. El área de raspado que se definió para el estudio fue de 27cm2. La muestra colectada fue envasada en un frasco ámbar de 60 mL, se tiñó con solución Lugol, se fijó con solución de Transeau y posteriormente se rotuló para su identificación.
3. Plancton: La comunidad planctónica fue muestreada utilizando una red cónica conectada a una botella colectora de 100 mL en su extremo terminal. Esta red poseía un ojo de malla de 23 μm para fitoplancton y de 80 μm para zooplancton. Posteriormente, las muestras de fitoplancton obtenidas mediante el filtrado fueron teñidas con Lugol y todas (fitoplancton y zooplancton) fijadas con solución Transeau y rotuladas para su transporte e identificación en el laboratorio de hidrobiología de SGS.
4. Macroinvertebrados bentónicos: La comunidad bentónica se muestreó mediante una Red tipo D, efectuando arrastres o kicks en un transecto de 100m de la estación de muestreo. Removiendo con pies y manos o agitando y resuspendiendo el sustrato situado a 0.5 m cercanos de la boca de la red; abarcando un área de 0.75 m2. Los ejemplares colectados fueron depositados en bolsas resellables, a las que se les adicionó solución Transeau para su preservación y finalmente rotuladas para su identificación.
5. Macrófitas: La toma de datos para macrófitas se realizó por medio de la utilización de una línea transecto de 10 m, la cual se extendió a lo largo de los parches donde hubo presencia de vegetación. Luego se ubicó un cuadrante de 50X50 cm en cada metro, intercalando a lo largo de la cuerda. Se reportó el porcentaje de cobertura y de cada especie por cuadrante para finalmente determinar la cobertura total de cada taxa en la comunidad (Ramírez, 2006). Posteriormente se colectó un organismo por taxón, tomando la totalidad de las partes vegetativas del ejemplar (raíz, tallo, hojas y flores en caso de que estuvieran presentes), fijando la planta sobre papel periódico con solución Transeau y finalmente se depositó en bolsas de cierre hermético.
6. Macroinvertebrados asociados a macrófitas: La comunidad de macroinvertebrados asociados a macrófitas se muestreó teniendo en cuenta el porcentaje de cobertura basados en procedimiento de Macrófitas cuantitativo en un transecto, considerando entre 3 u 4 cuadrantes de 0.5 m² para la colecta de invertebrados asociados teniendo en cuenta aquellos con el mayor porcentaje de cobertura. Para la colecta se utilizó una red tipo D de 250 μm a 300 μm con la cual se trazó un barrido de abajo hacia arriba capturando las diferentes especies de macrófitas preferiblemente flotantes, agitando las macrófitas para que los macroinvertebrados asociados a ellas cayeran dentro de la red; alternativamente a esto, se es posible realizar el corte de la raíz dejándola caer dentro de la red con el fin de asegurar la colecta total de los organismos asociados a ellas. Se lavó la red de tal manera que los organismos quedaran dentro de ella, fueran depositados en la bolsa de cierre hermético o tarros de boca ancha. Finalmente, se procedió a narcotizar la muestra agregando soda (solución carbonatada) con una tinción de Rosa de Bengala para poder fijar la muestra con etanol al 70% procurando dejar sumergidas la totalidad de la muestra o solución Transeau rotulando de manera adecuada en una bolsa para su envió al laboratorio.
7. Peces: Sacrificio: Los peces serán sacrificados empleando Benzocaína en solución acuosa dentro de un tanque o en frasco de cierre hermético. Fijación: La solución fijadora es formol al 10%, neutralizado con borato de sodio para evitar el deterioro óseo, individuos inferiores a 40mm de longitud total pueden ingresarse directamente a la solución, mientras que a ejemplares de mayor tamaño se les debe inyectar la misma solución a través del ano realizando perforaciones en los costados del ejemplar hasta que el mismo adquiera consistencia rígida, lo que garantiza la conservación de todos los tejidos. (Maldonado-Ocampo et al. 2005). Una vez los especímenes son fijados son empacados en bolsas plásticas, de cierre hermético, envolviendo los ejemplares en gaza humedecida con la solución fijadora, para mantener humedecido el ejemplar, esta bolsa se ingresará dentro de un frasco de plástico con cierre hermético que los contenga junto con la solución fijadora final que es alcohol al 70%. (Maldonado-Ocampo et al. 2005). Los especímenes serán trasportados envueltos en una gaza humedecida con la solución fijadora, esta bolsa se ingresará dentro de un frasco de plástico con cierre hermético que los contenga junto con la solución fijadora final.

Este recurso contiene 3.391 registros de grupos hidrobiológicos pertenecientes a los reinos: Animalia (1.485), Plantae (749), Chromista (647), Protozoa (284) y Bacteria (226). Corresponden a 20 filos, 34 clases, 77 órdenes, 186 familias y de los cuales 334 registros fueron identificados hasta especie (44 especies), 2.690 hasta género, 246 a familia, 60 a orden, 38 a clase y 23 a filo.

1. Animalia
   rank: kingdom
2. Plantae
   rank: kingdom
3. Chromista
   rank: kingdom
4. Protozoa
   rank: kingdom
5. Bacteria
   rank: kingdom

La caracterización de grupos hidrobiológicos se llevó a cabo en Colombia, departamento de Putumayo, municipio Puerto de asís.