Recurso Hidrobiológico del proyecto: Plan de Manejo Ambiental para la construcción y operación de las Plataformas Multipozos Bienparado A y E, su vía de acceso y su línea de flujo - Área de Desarrollo Bienparado, Bloque PUT 8
Citation
GeoPark Colombia S.A.S., SGS Colombia S.A.S (2025). Recurso Hidrobiológico del proyecto: Plan de Manejo Ambiental para la construcción y operación de las Plataformas Multipozos Bienparado A y E, su vía de acceso y su línea de flujo - Área de Desarrollo Bienparado, Bloque PUT 8. GeoPark Colombia S.A.S. Sampling event dataset https://doi.org/10.15472/kb5jeq accessed via GBIF.org on 2025-02-19.Description
El Plan de Manejo Ambiental para la Construcción y Operación de las Plataformas Multipozo Bienparado A y E, su vía de acceso y su línea de flujo -Área de Desarrolllo Bienparado, Bloque PUT 8 forma parte de uno de los programas incluidos dentro de la estrategia de crecimiento y desarrollo de AMERISUR EXPLORACIÓN COLOMBIA LTDA, en adelante “AMERISUR”, que pretende iniciar la producción de hidrocarburos en el Área de Desarrollo – AD- Bienparado.
Este recurso contiene los datos biológicos asociados a la caracterización de las comunidades hidrobiológicas del área de estudio, en sus diferentes parámetros: plancton, perifiton, bentos, macrófitas e ictiofauna. En total, el presente recurso consta de 586 registros biológicos (10 eventos de muestreo).
Los municipios con representación son Puerto Gaitán y Puerto López, ubicados en el departamento de Meta. El recurso se distribuye taxonómicamente en los reinos Animalia (212), Bacteria (66), Chromista (119), Plantae (133) y Protozoa (56).
Purpose
Construcción, operación, mantenimiento y abandono de la Plataformas multipozos Bienparado A y Bienparado E, sus vías de acceso (construcción-V2.1 y adecuación-V2) y construcción de una línea de flujo entre la plataforma multipozo Bienparado A y la plataforma multipozo Bienparado E (LF BP A- BP E).
Sampling Description
Study Extent
Las Plataformas multipozos Bienparado A y Bienparado E están ubicadas en las unidades territoriales Las Camelias y Bajo Mansoyá, respectivamente, en jurisdicción del municipio de Puerto Asís, departamento del Putumayo. El Área de Desarrollo Bienparado, en adelante AD Bienparado, cuenta con un área de 802,86 Ha.Sampling
Este recurso contiene los datos biológicos asociados a la caracterización de las comunidades hidrobiológicas del área de estudio, en sus diferentes parámetros: plancton, perifiton, bentos, macrófitas e ictiofauna. Para el presente estudio se establecieron 15 puntos de muestreo, los cuales estuvieron ubicados en el proyecto Plan de manejo ambiental para la construcción y operación de las plataformas multipozos Bienparado A y E, su vía de acceso y su línea de Flujo - Área de desarrollo Bienparado, Bloque PUT 8, en el municipio de Puerto Asís, Putumayo. La recolección de muestras biológicas del presente estudio se realizó durante los días 25, 26, 27 y 28 de febrero de 2024.Method steps
- Las metodologías utilizadas para toma de muestras en campo y el análisis en laboratorio se basó en el manejo de la metodología descrita por el Standard Methods edición 23 y de otras literaturas que describen procedimientos normalizados, validados y certificados para la correcta obtención de los datos hidrobiológicos.
- La Resolución 01184 del 07 de julio de 2021 (ANLA) otorgó a SGS Colombia S.A.S; el permiso de recolección de especímenes de especies silvestres de la diversidad biológica con fines de elaboración de estudios ambientales. Además, mediante la Resolución 1001 del 07 de septiembre de 2021 para el laboratorio sede Bogotá y la Resolución 0490 del 08 de junio de 2021 para la Sede de Soledad (Atlántico) ambas acreditan a SGS COLOMBIA S.A.S., como entidad pertinente para producir información cuantitativa, física, química y biológica para estudios y análisis ambientales requeridos por las autoridades ambientales.
- Fase de campo: En cada sitio de monitoreo se procedió inicialmente a registrar las características propias del medio como el tipo de sistema, ancho, profundidad, color del agua, corriente, sustrato, vegetación circundante y todo tipo de posibles causantes de contaminación o impactos evidentes sobre el ecosistema en cuestión. Posteriormente, siguiendo la metodología propuesta anteriormente y basándose en el procedimiento EHS-OPE-P-15 se realizó la toma de muestras del material biológico.
- Colecta perifiton: Para efectos del estudio biológico de esta comunidad, se escogieron varios sustratos (roca, hoja y tronco), sumergidos o que estuvieran en constante contacto con el agua, para raspar la biopelícula adherida a ellos mediante un cepillo de dientes. El área de raspado que se definió para el estudio fue de 72 cm2. La muestra colectada fue envasada en un frasco ámbar de 60 mL, se tiñó con solución Lugol, se fijó con solución de Transeau y posteriormente se rotuló para su identificación.
- Colecta fitoplancton y zooplancton: La comunidad planctónica fue muestreada utilizando una red cónica conectada a una botella colectora de 100 mL en su extremo terminal. Esta red poseía un ojo de malla de 23 μm para fitoplancton y de 80 μm para zooplancton. Posteriormente, las muestras de fitoplancton obtenidas mediante el filtrado fueron teñidas con Lugol y todas (fitoplancton y zooplancton) fijadas con solución Transeau y rotuladas para su transporte e identificación en el laboratorio de hidrobiología. de SGS
- Colecta maroinvertebrados bentónicos: El muestro se realizó con Red tipo D, efectuando arrastres o kicks en un transecto de 100m de la estación de muestreo. Removiendo con pies y manos o agitando y resuspendiendo el sustrato situado a 0.5 m cercanos de la boca de la red; abarcando un área de 0,75 m2. Los ejemplares colectados fueron depositados en bolsas resellables, a las que se les adicionó etanol al 70% para su preservación y rosa de bengala para teñir, finalmente rotuladas para su identificación.
- Colecta macrófitas: La toma de datos para macrófitas se realizó por medio de la utilización de una línea transecto de 10 m, la cual se extendió a lo largo de los parches donde hubo presencia de vegetación. Luego se ubicó un cuadrante de 50X50 cm en cada metro, intercalando a lo largo de la cuerda. Se reportó el porcentaje de cobertura y de cada especie por cuadrante para finalmente determinar la cobertura total de cada taxón en la comunidad. Posteriormente se colectó un organismo por taxón, tomando la totalidad de las partes vegetativas del ejemplar (raíz, tallo, hojas y flores en caso de que estuvieran presentes), fijando la planta sobre papel periódico con etanol al 70% y finalmente se depositó en bolsas de cierre hermético.
- Colecta ictiofauna: Para la recolección de peces se delimitó el área de muestreo y se procedió a la búsqueda activa durante 60 minutos, realizando la captura mediante red de mano en sistemas de poca profundidad y asociados a vegetación, atarraya o red de pantalla en sistemas con profundidades mayores a 60 cm. Se tomaron fotografías in situ de los organismos utilizando el ictiómetro y colocando el ejemplar en plano sagital con la cabeza hacia la izquierda. Se fijaron los organismos (un individuo por especie) en frascos con formol al 10% y posteriormente se rotularon para su traslado al laboratorio.
- Fase de laboratorio: Las muestras recolectadas fueron analizadas para las comunidades en el laboratorio de hidrobiología de SGS COLOMBIA S.A.S., ubicado en la Carrera 100 # 25 C – 11 de la ciudad de Bogotá – Colombia.
- PERIFITON Y FITOPLANCTON: Las muestras fueron homogenizadas por agitación del recipiente 15 veces consecutivas, la metodología utilizada se encuentra referenciada en el Standard Methods Edición 23. Esta metodología permitió un mejor manejo de los datos para la aplicación de la técnica de análisis de una alícuota. Para este análisis se utilizó una micropipeta transferpette de 10 - 100 μL estableciendo un volumen de 70 μL para cada alícuota. Una vez ubicada la muestra bajo el microscopio óptico compuesto se realizó un barrido en zigzag en el aumento de 40X de manera que abarcara la mayor área posible de la alícuota y contando tantas alícuotas como sea necesario (mínimo 10 alícuotas) hasta que la curva de riqueza acumulada se estabilizara. Para la identificación de las muestras se utilizó literatura especializada mientras que para la clasificación taxonómica de cada especie se tuvo en cuenta la base de datos taxonómica Algaebase.
- ZOOPLANCTON: Las muestras fueron homogenizadas por agitación del recipiente 15 veces consecutivas. El análisis de las muestras se enfoca en la utilización de una placa SR (Sedgwick-Rafter) y una pipeta graduada de 1 mL, que es el volumen utilizado por alícuota. La muestra se colocó bajo el microscopio óptico compuesto y se analiza realizando un barrido en zigzag bajo el aumento de 10X. Se deben analizar tantas alícuotas sean necesarias hasta que la curva de diversidad acumulada se estabilizara (mínimo 10 alícuotas). La identificación de los organismos se realizó con literatura especializada mientras que para la clasificación taxonómica se utilizó la base de datos taxonómica Integrated Taxonomy Information System (ITIS, s.f.).
- MACROINVERTEBRADOS BENTÓNICOS Y ASOCIADOS A MACRÓFITAS: Cada muestra fue trabajada de manera independiente sometiéndolas a un lavado con agua sobre unos tamices de 250 μm y 710 μm cuyo objetivo fue separar los organismos de las impurezas (material vegetal y sedimentos). Los organismos fueron sometidos a tinción con solución de Rosa de Bengala durante mínimo una (1) hora para facilitar la separación, que se llevó a cabo en cajas de Petri bajo el estereoscopio. Una vez separados los organismos, se identificaron utilizando literatura especializada; mientras que para la clasificación taxonómica se tuvo en cuenta la base de datos taxonómica Integrated Taxonomy Information System (ITIS, s.f.).
- MACRÓFITAS: El procedimiento para el análisis de las macrófitas estuvo basado en la propuesta APHA-AWWAWPCF, (2012) donde las plantas fueron sometidas a un lavado con agua de la llave para eliminar el exceso de preservante y de sedimento, luego se ubicó sobre una bandeja con agua para resaltar cualquier estructura necesaria para su identificación. Se examinó cada individuo con la ayuda de literatura especializada. Para la clasificación taxonómica se tuvo en cuenta la base de datos taxonómica Integrated Taxonomy Information System (ITIS, s.f.).
- ICTIOFAUNA: Los organismos preservados, fueron sometidos a un análisis minucioso de la morfología con la ayuda de estereoscopio y microscopio; para luego ser determinados a la mayor resolución taxonómica posible, dependiendo la complejidad del grupo y el estado fenológico o de preservación de los ejemplares. Para su identificación se usó literatura especializada. Una vez identificados fueron clasificados por la base taxonómica: Fishbase.
Taxonomic Coverages
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Maxillopodarank: class
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Monogonontarank: class
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Eurotatoriarank: class
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Insectarank: class
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Malacostracarank: class
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Clitellatarank: class
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Arachnidarank: class
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Bivalviarank: class
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Collembolarank: class
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Hapalosiphonrank: genus
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Komvophoronrank: genus
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Pseudanabaenarank: genus
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Leptolyngbyarank: genus
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Merismopediarank: genus
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Phormidiumrank: genus
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Oscillatoriarank: genus
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Planktothrixrank: genus
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Limnothrixrank: genus
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Geitlerinemarank: genus
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Planktolyngbyarank: genus
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Lyngbyarank: genus
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Aphanocapsarank: genus
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Raphidiopsisrank: genus
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Gomphonemarank: genus
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Navicularank: genus
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Pinnulariarank: genus
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Frustuliarank: genus
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Nitzschiarank: genus
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Eunotiarank: genus
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Hantzschiarank: genus
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Amphipleurarank: genus
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Brachysirarank: genus
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Tribonemarank: genus
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Actinellarank: genus
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Surirellarank: genus
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Characiopsisrank: genus
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Encyonemarank: genus
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Luticolarank: genus
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Sellaphorarank: genus
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Synurarank: genus
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Cymbellarank: genus
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Trinemarank: genus
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Vorticellarank: genus
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Clathrulinarank: genus
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Chlorophyceaerank: class
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Zygnematophyceaerank: class
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Conjugatophyceaerank: class
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Ulvophyceaerank: class
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Trebouxiophyceaerank: class
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Liliopsidarank: class
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Lepocinclisrank: genus
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Phacusrank: genus
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Trachelomonasrank: genus
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Euglenarank: genus
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Arcellarank: genus
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Nebelarank: genus
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Euglypharank: genus
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Difflugiarank: genus
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