Comunidad Ficoperifítica en el área de influencia del Proyecto Hidroeléctrico Ituango

Study Extent

Sampling

Quality Control

Method steps

1. Métodos en campo Previo a la colecta de especímenes para los análisis de ensamblajes, se diligencia el formato de evaluación rápida de ecosistemas acuáticos (hábitat), en el cual se describen las principales características físicas del cuerpo de agua en la estación de muestreo. En cada estación de muestreo se toman datos fisicoquímicos “in situ” (oxígeno disuelto, porcentaje de saturación de oxígeno, pH, turbidez, conductividad y temperatura).
2. Para la evaluación física de los diferentes hábitats de las comunidades hidrobiológicas, se utilizó los protocolos para la valoración física AUSRIVAS (Australian River Assessment System) (Parsons et al., 2002) y de evaluación de hábitat propuestos por Agencia de Protección Ambiental de Estados Unidos (USEPA) (Barbour et al., 1998), adaptados para corrientes tropicales.
3. El ficoperifiton que crece sobre el sustrato sumergido y cercano a la columna de agua, es colectado mediante la remoción por cuadrante. La colecta se efectúa raspando los sustratos sumergidos en el cuerpo de agua tales como troncos, hojas y sustratos artificiales como plásticos. Para esto se emplean como instrumento cepillos plásticos (cerdas de nailon) y se tiene en cuenta un área de remoción correspondiente a un cuadrante de 10 cm2 (unidad de muestreo). Se realizan como esfuerzo de muestreo 10 raspados o remociones en el área del cuadrante, a lo largo de un transecto de 100m de longitud por cada estación de muestreo.
4. Los organismos adheridos al cepillo son introducidos en frascos oscuros, posteriormente son fijados en una solución de Lugol al 10%. Las muestras colectadas fueron transportadas en envases plásticos opacos o ámbar debidamente rotulados (código, nombre del sitio, fecha, hora, sustrato, nombre del colector y tipo de fijador), y colocados en un contenedor plástico o nevera de poliestireno debidamente sellados; garantizando que se mantengan en posición horizontal y alejados de productos volátiles o corrosivos.
5. Métodos en el Laboratorio Se prepararon montajes de alícuotas de las muestras de red, previa homogenización de la muestra completa por agitación suave para poder realizar la identificación de los organismos. Estas preparaciones se observaron en microscopio fotónico a una magnificación entre 500X, mediante recorrido en zigzag por toda la superficie del cubreobjetos.
6. El conteo se realizó bajo microscopio invertido a una magnificación total de 500X, en 30 campos, siguiendo la metodología de campos al azar, mediante una tabla de números aleatorios previamente preparada.

1. Bacillariophyceae
   rank: class
2. Xanthophyceae
   rank: class
3. Dinophyceae
   rank: class
4. Cryptophyceae
   rank: class
5. Chrysophyceae
   rank: class
6. Eustigmatophyceae
   rank: class
7. Phaeophyceae
   rank: class
8. Raphidophyceae
   rank: class

1. Cyanobacteriales
   rank: order
2. Pseudanabaenales
   rank: order
3. Oscillatoriales
   rank: order
4. Leptolyngbyales
   rank: order
5. Synechococcales
   rank: order
6. Nostocales
   rank: order
7. Chlamydomonadales
   rank: order
8. Flavobacteriales
   rank: order

1. Chlorophyceae
   rank: class
2. Zygnematophyceae
   rank: class
3. Ulvophyceae
   rank: class
4. Trebouxiophyceae
   rank: class
5. Bryopsida
   rank: class
6. Florideophyceae
   rank: class
7. Charophyceae
   rank: class
8. Zygnemophyceae
   rank: class

1. Trachelomonas
   rank: genus
2. Euglena
   rank: genus
3. Phacus
   rank: genus
4. Colacium
   rank: genus
5. Lepocinclis
   rank: genus
6. Strombomonas
   rank: genus
7. Monomorphina
   rank: genus