Caracterización de endoparásitos y ectoparásitos de murciélagos (Mammalia, Chiroptera) de Leticia, Amazonas, Colombia
Citation
Cajiao Mora K A, Chaparro Gutierrez J J, Ramirez Nieto G C (2023). Caracterización de endoparásitos y ectoparásitos de murciélagos (Mammalia, Chiroptera) de Leticia, Amazonas, Colombia. Universidad Nacional de Colombia. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/vpx8qd accessed via GBIF.org on 2024-11-06.Description
A pesar de la relevancia biológica y ecológica que representan los parásitos de murciélagos, y siendo Colombia el segundo país con mayor diversidad de especies de murciélagos en el mundo, son pocos los estudios realizados enfocados en la riqueza parasitaria de estos mamíferos voladores. En el conocimiento de los autores, ningún estudio en el Amazonas colombiano.
En el presente trabajo se caracterizaron endoparásitos y ectoparásitos de murciélagos capturados entre julio y agosto del 2021 en 5 puntos de captura asociados a la ciudad de Leticia, Amazonas.
Un total de 44 murciélagos, distribuidos en 26 especies y 6 familias (Phyllostomidae, Vespertillionidae, Molossidae, Noctilionidae, Thyropteridae, Emballonuridae) se inspeccionaron en búsqueda de parásitos, de los cuales 21 individuos estuvieron parasitados por un total de 181 endo- y ectoparásitos distribuidos en 10 familias, como son: Nematoda: Capillaridae, Molineidae, Onchocercidae, Rictulariidae; Acanthocephala: Oligocanthorhynchidae; Plathyelminthes: Dicrocoeliidae, Lecithodendriidae, Hymenolepididae; Diptera: Hippoboscidae, Acari: Spinturnicidae.
Todos los registros del presente trabajo son nuevos reportes de localidad para Colombia. Se reporta, el cistacanto Neoncicola, cestodos del género Vampirolepis y cestodos sin identificar, el nemátodo Pterygodermatites (Paucipectines), la mosca Strebla machadoi y los ácaros Spinturnix surinamensis y Periglischrus tonatii parasitando, por primera vez, murciélagos en Colombia. Se reportan también nuevas asociaciones huésped-parásito.
Sampling Description
Study Extent
El muestreo se realizó en la ciudad de Leticia, capital del departamento del Amazonas (0°20’N, 4°14’S, 69°20’E, 74°10’O), la cual presenta una altitud de 80 m. s. n. m., humedad relativa de 85%, precipitación promedio de 3440 mm/año, y un rango de temperatura media de 25°C a 38°C. La ciudad está ubicada a orillas del cauce principal del río Amazonas; su ecosistema predominante es de bosque húmedo tropical y las fuentes hídricas drenan al río Amazonas (Mesa et al., 1996). Se escogieron 5 puntos estratégicos para realizar el muestreo, con las siguientes coordenadas: A 4° 11’ 28.7” S; 69° 57’ 0.04” W. B 4° 11’ 53.4” S; 69° 56’ 48.2” W. C 4° 11’ 25.5” S; 69° 57’ 0.09” W. D 4° 12’ 05.4” S; 69° 56’ 37.4” W. E 4° 11' 31" S; 69° 57' 5" W.Sampling
La captura de murciélagos se realizó en el marco del proyecto “Investigación en Conservación y aprovechamiento sostenible de la diversidad biológica, socioeconómica y cultural de la Amazonía colombiana” del Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas SINCHI, Programa de Ecosistemas y Recursos Naturales. El Instituto Sinchi, en el marco de su misión institucional y amparado por el decreto 1376 de 2013, parágrafo 1, no requiere del Permiso de Recolección de Especímenes Silvestres otorgado por la ANLA. Par la captura de hospedadores se destinaron dos noches a cada sitio de captura, y se usaron redes de niebla de 9m de largo x 2.5m de alto. Las redes se desplegaron entre las 17:00 y las 22:00 horas con revisiones periódicas cada 15 a 30 minutos. La identificación taxonómica de los murciélagos se hizo por un mastozoologo utilizando claves y criterios de los especímenes de referencia de la zona de estudio (Lopez-Baucells et al., 2016). Tras ser capturados fueron depositados en bolsas de tela individuales hasta su traslado al laboratorio en donde se realizó el protocolo de eutanasia y necropsia. Los ectoparásitos fueron colectados con pinzas entomológicas y depositados en tubos de microcentrífuga con etanol 70% siguiendo la técnica modificada de Whitaker et al. (2009). La necropsia se hizo siguiendo la técnica de Gardner y Jiménez (2009) con modificaciones, los segmentos del tracto digestivo se separaron en platos de Petri individuales con solución salina (NaCl 0.9%), se examinó la cavidad abdominal en busca de endoparásitos y posteriormente se evaluó el tracto digestivo bajo estereomicroscopio. Los céstodos, tremátodos y acantocéfalos fueron depositados en agua destilada para la relajación de estructuras relevantes para la identificación morfológica. El retiro de exceso de contaminantes de los nemátodos se realizó con solución salina (NaCl 0.9%). Posteriormente todos los especímenes se depositaron en tubos de microcentrífuga individuales con formol 10% debidamente rotulados; algunos individuos de especies representativas se depositaron en tubos de microcentrífuga con etanol 70% para realizar estudios moleculares.Method steps
- Captura de los hospedadores murciélagos con redes de niebla de 9m de largo x 2.5m de alto. Las redes se desplegaron entre las 17:00 y las 22:00 horas con revisiones periódicas cada 15 a 30 minutos. La identificación taxonómica de los murciélagos se hizo por un mastozoologo utilizando claves y criterios de los especímenes de referencia de la zona de estudio (Lopez-Baucells et al., 2016).
- Tras ser capturados fueron depositados en bolsas de tela individuales hasta su traslado al laboratorio en donde se realizó el protocolo de eutanasia y necropsia.
- Los ectoparásitos fueron colectados con pinzas entomológicas y depositados en tubos Ependorf con etanol 70% siguiendo la técnica modificada de Whitaker et al. (2009).
- La necropsia se hizo siguiendo la técnica de Gardner y Jiménez (2009) con modificaciones, los segmentos del tracto digestivo se separaron en platos de Petri individuales con solución salina (NaCl 0.9%), se examinó la cavidad abdominal en busca de endoparásitos y posteriormente se evaluó el tracto digestivo bajo estereomicroscopio.
- Los céstodos, tremátodos y acantocéfalos fueron depositados en agua destilada para la relajación de estructuras relevantes para la identificación morfológica. Luego fueron fijados en formol caliente al 10% y almacenados en tubos Ependorf con formol 10% o ETOH 70%.
- El retiro de exceso de contaminantes de los nemátodos se realizó con solución salina (NaCl 0.9%), luego fueron fijados en formol caliente al 10% y almacenados en tubos Ependorf con formol 10%.
- Se hicieron tinciones con Carmín Acético de Semichon en céstodos y tremátodos, posteriormente se deshidrataron, se aclararon y se hicieron montajes permanentes con bálsamo de Canadá.
- Los nemátodos fueron aclarados con Lactofenol de Amann y se hicieron montajes temporales en láminas para ser observadas al microscopio.
- Los dípteros fueron observados directamente mediante estereomicroscopio para su identificación taxonómica. Los ácaros se aclararon con KOH 10% y aceite de clavo y se hicieron montajes permanentes en balsamo de Canadá.
- Se utilizo un microscopio Olympus BX53 con cámara digital Olympus DP74 y un estereomicroscopio Olympus SZX7 con camara digital Olympus DP27. Se tomaron medidas de los parásitos mediante las fotos y usando un software Olympus cellSens 2.3. La identificación de los parásitos se hizo mediante claves taxonómicas, literatura de referencia para hospedadores y para la zona y consulta a expertos. Ácaros: Herrin and Tipton, 1975; Colín-Martínez and García-Estrada, 2016; de Almeida et al., 2018, 2016; Dusbábek and Lukosehus, 1971; Gettinger and Gribel, 1989; Morales-Malacara, 2001; Morales-Malacara and Juste, 2002. Dípteros: Dick et al., 2016; Graciolli et al., 2019; Guerrero, 1997, 1996, 1995a, 1995b, 1994, 1993; Tarquino-Carbonell et al., 2015 Nemátodos: Amin, 1987; Anderson et al., 2009; Angoma et al., 2020; Caspeta-Mandujano et al., 2013; Cuartas-Calle and Muñoz-Arango, 1999; de Albuquerque et al., 2016; de Oliveira Simões et al., 2019; Esslinger, 1973; Falconaro et al., 2018; García-Prieto et al., 2014; Mello and Silva, 2019; Notarnicola et al., 2010; Santos and Gibson, 2015; Schmidt, 1925; Simões et al., 2022; Smales, 2007; Travassos, 1917; Vaucher and Durette-Desset, 1999. Céstodos y tremátodos: Angoma et al., 2020; Caballero and Caballero, 1969; Caro et al., 2003; Fernandes et al., 2021; Khalil et al., 1994; Lunaschi and Notarnicola, 2010; Makarikova et al., 2012; Marshall and Miller, 1979; Santos and Gibson, 2015, 1998; Tkach et al., 2018.
Taxonomic Coverages
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Animaliarank: kingdom
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Arachnidarank: order
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Archiacanthocephalarank: order
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Cestodarank: order
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Chromadorearank: order
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Enoplearank: order
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Insectarank: order
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Tramtodarank: order
Geographic Coverages
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