Caracterización de los grupos hidrobiológicos asociados al Estudio de Impacto Ambiental del área de perforación exploratoria RECETOR Norte

Study Extent

El Área de Perforación Exploratoria – APE Recetor Norte se ubica en dos zonas de vida, el 81,40% en el bosque húmedo tropical (bh-T), incluyendo la totalidad del área de perforación exploratoria y el 18,60% restante se encuentra en la zona de vida del Bosque húmedo Premontano (bh-PM).

Sampling

El muestreo de las comunidades hidrobiológicas se llevó a cabo en los mismos puntos en los que se ejecutó el análisis fisicoquímico. En cada uno de los sitios de monitoreo se tomaron muestras de Perifiton, Zooplancton, Fitoplancton, Macro invertebrados, Fauna Íctica y Macrófitas acuáticas.

Method steps

1. Se realizaron muestreos de fitoplancton, zooplancton, perifiton, macroinvertebrados acuáticos, vegetación acuática (Macrófitas) y peces, en las corrientes de interés determinadas para la caracterización del componente hídrico según las propuestas para el uso y aprovechamiento del recurso en el desarrollo de las actividades de exploración, como se mencionó anteriormente. El monitoreo del componente hidrobiológico estuvo a cargo del laboratorio ambiental Ambienciq y Chemilab, el cual cuenta con acreditación IDEAM.
2. PERIFITON: se identificaron elementos del sustrato que sirven de puntos de fijación y establecimiento, como piedras, hojarasca, troncos y detritos. Sobre estos, se realizó un raspado suave y superficial utilizando un cuadrante de 9 cm2 y un cepillo, se realizo 11 veces por cada estación. Se limpió suavemente el área del cuadrante y se almacenó la muestra en frascos de 500 mL. El esfuerzo de muestreo empleado fue igual a diez (10) sub muestras por estación de muestreo, que corresponden a 90 cm2 (0,9m2) de área muestreada; las sub muestras formaron una sola muestra compuesta que contiene la variabilidad de ambientes en cada estación. Preservación y transporte de muestras: Las muestras fueron preservadas en solución de Lugol y almacenadas en frascos de 500 mL. Posteriormente las muestras fueron debidamente etiquetadas. El material colectado y preservado fue transportado en neveras contenedoras plásticas.
3. FITOPLANCTON Y ZOOPLANCTON: La colecta de la muestra de los organismos planctónicos se realizó empleando redes cónicas de plancton con apertura de ojo de malla de 23 μm para fitoplancton y 54 μm para zooplancton. El agua filtrada en las mallas fue tomada directamente del cuerpo de agua mediante un recipiente aforado con lo cual se evaluó un volumen de agua conocido filtrado. Preservación y transporte de muestras: El material colectado en el cono se almacenó en frascos de 500 mL. Las muestras de fitoplancton fueron preservadas en solución de Lugol, las muestras de zooplancton fueron preservadas en solución de Formol al 10%. Cada muestra fue etiquetada con información correspondiente a datos de lugar y fecha de colecta (dd/mm/aaaa), estación de muestreo (georreferenciación), colector y método de colecta. El material colectado y preservado fue transportado en neveras plásticas de 50L de capacidad selladas.
4. MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS: Para la captura de macroinvertebrados acuáticos en sistemas loticos someros (profundidad ≤30cm), se empleó una red Surber y una Red tipo D, de 30cm x 30cm (900cm2 de área). Se situó el dispositivo en el sustrato del cuerpo de agua, paralelo al flujo de la corriente, con la red dirigida aguas abajo (contracorriente) removiendo suavemente todo el material que se encuentre dentro del marco para desprender los organismos que estén fijos a él (APHA, 2005). La muestra colectada se transfirió lentamente in situ, por una serie de tamices especialmente diseñados, evitando dañar o perder especímenes. Los tamices implementados con aberturas de malla de 1 y 5 cm retuvieron los materiales más grandes tales como hojas, palos conchas y grava, permitiendo el paso de los organismos y materiales más pequeños a un tamiz US Standard No. 30 que presenta una abertura de malla entre 0,595 y 0,600 mm (APHA, 2005). Preservación y transporte de muestras: Las muestras tamizadas se preservaron en etanol al 70% y fueron almacenadas en frascos plásticos de 500 mL. Cada muestra contó con etiquetas de campo que describen los datos de lugar y fecha de colecta (dd/mm/aaaa), estación de muestreo (georreferenciación), colector y método de colecta. El material colectado y preservado fue transportado en contenedores plásticos.
5. MACRÓFITAS ACUÁTICAS: Para identificar la composición, frecuencia, cobertura y densidad de la vegetación acuática, se emplearon 10 cuadrantes por punto, en un transecto de 50m perpendicular a la orilla del sistema cuando posible, las plantas fueron colectadas en su pico de crecimiento, es decir cuando las flores y/o frutos estaban presentes, colectando toda la planta (tallos, rizomas, hojas, raíces, flores y frutos). Preservación y transporte de muestras: El material colectado, fue prensado en campo o envuelto en capas de papel y sumergido en alcohol al 70%. Se usó una nevera plástica con hielo triturado para el almacenamiento en campo y transporte (APHA, 2005).
6. PECES: Para el muestreo de la comunidad íctica se emplearon diferentes artes de pesca, dependiendo de las características particulares del cuerpo de agua y con el objeto de obtener la riqueza máxima posible, para que, de esta manera, se tenga como resultado un listado representativo de especies y sus abundancias relativas. Muestreo puntual por medio de una red de arrastre (5m*1m), con ojo de malla de 1cm y una nasa de diámetro 0,7 m y ojo de malla de 150µm, con un esfuerzo de pesca de 60 minutos en un área de 100 m2.

El presente recurso consta de 1.406 registros biológicos pertenecientes a los reinos Animalia (618), Bacteria (78), Chromista (415), Plantae (170) y Protozoa (125), distribuidos en 34 clases, 57 órdenes, 114 familias, 198 géneros y 2 especies. Del total, un 93.6% fue identificado a nivel de género y el 6.4% se identificó a categorías taxonómicas superiores. En cuanto al reino Animalia, los 618 registros biológicos se distribuyen en 15 clases, 21 órdenes, 61 familias y 128 géneros. Un 87.1% fue identificado a nivel de género y el 12.9% restante, identificado a categorías taxonómicas superiores.

1. Bdelloidea
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2. Bivalvia
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3. Clitellata
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4. Collembola
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5. Euchelicerata
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6. Eurotatoria
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7. Gastropoda
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8. Hexanauplia
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9. Insecta
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10. Maxillopoda
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11. Monogonta
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12. Nematoda
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13. Oligochaeta
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14. Ostracoda
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15. Trepaxonemata
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En cuanto al reino Bacteria, los 78 registros biológicos se distribuyen en 3 órdenes, 5 familias y 9 géneros. La totalidad de los registros se identificó a nivel de género.

1. Nostocales
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2. Oscillatoriales
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3. Synechococcales
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En cuanto al reino Chromista, los 415 registros biológicos se distribuyen en 6 clases, 13 órdenes, 18 familias y 22 géneros. La totalidad de los registros se identificó a nivel de género.

1. Bacillariophyceae
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2. Coscinodiscophyceae
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3. Fragilariophyceae
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4. Imbricatea
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5. Mediophyceae
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6. Synurophyceae
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En cuanto al reino Plantae, los 170 registros biológicos se distribuyen en 8 clases, 16 órdenes, 22 familias, 30 géneros y 2 especies. Del total, se identificó un 94.7% a nivel de género y el 5.3% restante a nivel de familia y especie.

1. Chlorophyceae
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2. Conjugatophyceae
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3. Magnoliidae
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4. Magnoliopsida
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5. Polypodiidae
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6. Trebouxiophyceae
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7. Ulvophyceae
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8. Zygnematophyceae
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En cuanto al reino Plantae, los 125 registros biológicos se distribuyen en 4 clases, 4 órdenes, 9 familias y 12 géneros. La totalidad de los registros se identificó a nivel de género.

1. Euglenophyceae
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2. Filosia
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3. Lobosa
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4. Tubulinea
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El Área de Perforación Exploratoria Recetor Norte, se ubica en las jurisdicciones de los municipios de Aguazul y Yopal, en el departamento del Casanare, ubicado en el entalle de la cordillera Oriental en la cuenca del Río Charte principalmente.