Biodiversidad asociada al proyecto Parque Solar Fotovoltaico Tepuy
Citation
Gomez Patiño J C, Carmona Cano E, Aguilar Amaya E M, Grisales F A, Marin D, Téllez L, Rodriguez Ríos D F, Giraldo Gómez S, Rodriguez S, Betancur Huiguita S C, Santana D, Garcés Quintero E Y, Ordoñez Castillo N F, Gómez Monsalve R, Garcia S, Vargas C A, Amador J A, Quintero E A, Palacio S, Gallo S M, Servicios Ambientales y geográficos SAG S.A (2022). Biodiversidad asociada al proyecto Parque Solar Fotovoltaico Tepuy. Version 2.2. Empresas Públicas de Medellín E.S.P.. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/maulhd accessed via GBIF.org on 2024-04-23.Description
El proyecto consiste en un parque solar fotovoltaico de 96,7 MW pico (Potencia nominal aproximada de 83 MW) localizado en el municipio de La Dorada, Caldas, en el Magdalena Medio, el cual se interconectaría al Sistema Interconectado Nacional (SIN) en la subestación Purnio de CHEC (Operador de red) a un nivel de tensión de 115 kV. Se instalarían alrededor de 285.000 módulos fotovoltaicos de 360-400 Wp en una extensión de terreno aproximada de 220 Ha. La caracterización biótica del proyecto, se realizó bajo el permiso de recolección Resolución 0269 del 13 de marzo de 2017.
Este recurso contiene 3.641 registros, distribuidos en los reinos Plantae (1.978), Fungi (813), Animalia (684), Chromista (959, Protozoa (43) y Bacteria (28). Con un 70% clasificado a nivel de especie, 25% a género, 2% a clase y 3% a categorías superiores. Los datos fueorn tomados en el municipio de La Dorada, Caldas en el 2018.
Los datos de este recurso, son procedentes de un Estudio de Impacto Ambiental, realizado para la obtención de la licencia ambiental para el proyecto.
Sampling Description
Study Extent
Se encuentra localizado al sur del área urbana del municipio de La Dorada, limitando al norte con la cabecera municipal y la vereda La Arenosa, al sur con la vereda La Petrolea y al oriente con el Rio Magdalena. El proyecto se ubicará en una zona rural, y abarcará una extensión de 220,39 Ha, área que será denominada en el presente estudio como área de intervención.Sampling
La caracterización del área de influencia biótica se realizó mediante la aplicación las siguientes metodologías: Para plantas se realizó un inventario al 100% de fustales (DAP mayor a 10 cm) y para la evaluación de epífitas se utilizó la metodología de Análisis Rápido y Representativo de la diversidad de epífitas (RRED-analysis). Para el levantamiento de fauna se avaluaron los grupos de vertebrados terrestres con las metodologías específicas. Finalmente se realizó la caracterización de Ecosistemas Acuáticos, con dos campañas de monitoreo en los meses de junio y septiembre de 2018 para la evaluación hidrobiológica de los grupos bióticos perifíton, bentos (macroinvertebrados acuáticos), peces, plancton (fito y zoo) y macrófitas, de los ecosistemas lóticos y lénticos representativos.Method steps
- Flora-Inventario al 100%: El inventario al 100% consistió en censar uno a uno los individuos fustales con diámetro a la altura del pecho (DAP) superior a 10 cm en el área de muestreo del proyecto. Los individuos encontrados fueron georreferenciados y marcados con pintura asfáltica de color amarillo sobre el tallo. A cada individuo se le registraron variables dasométricas tales como: circunferencia a la altura del pecho (CAP) y altura total (Ht). Para las especies que no fue posible identificar en campo, se procedió a colectar una muestra botánica para su posterior identificación en el Herbario de la Universidad de Antioquia (HUA). La colección botánica de las especies se encuentra amparada bajo la Resolución 0269 del 13 de marzo de 2017 emitida por la ANLA (Ver Anexo 2.4). Para el marcaje de los individuos, se asignó un código alfa-numérico, el cual está determinado según el equipo o cuadrilla (A, B, C, etc) y el número consecutivo de campo de cada individuo arbóreo dentro del muestreo (A1, A2, …B1, B2, etc). Para realizar la caracterización de la regeneración natural de estas áreas, se establecieron parcelas de 50 x 4 m (200 m2) para el registro de latizales y subparcelas de 4 x 5 m (20 m2), para el registro de individuos de la categoría brinzal. Estas parcelas fueron distribuidas al azar a lo largo del área de aprovechamiento inventariada al 100%. En cada parcela, se censaron los individuos dentro del rango de 1<DAP≤9,9 cm, discriminándolos de acuerdo a la categoría de brinzal (<5 cm) y latizal (entre 5 y 10 cm). Para los latizales se registró la circunferencia a la altura del pecho y la altura total de cada individuo, a lo largo de toda la parcela; para los individuos categorizados como brinzales, se realizó un conteo por especies y se estimó la altura total en la subparcela. Estas parcelas se montaron con base en la metodología utilizada por Gentry (1982), denominada RAP (Rapid Assessment Plot) y modificada posteriormente por el Convenio ISA-JAUM (2000).
- Flora-Epífitas: Para la caracterización de la flora epífita se siguió la metodología de Análisis Rápido y Representativo de la diversidad de epífitas (RRED-analysis) propuesta por Gradstein et. al (2003), en donde se evalúan ocho (8) árboles maduros, de diferentes especies, para representar la diversidad de epífitas vasculares y no vasculares presentes por cada hectárea de cobertura natural. Estos ocho árboles hospederos fueron escogidos al azar, garantizando que los árboles evaluados se encontraran distribuidos en toda el área de muestreo, en categoría fustal (DAP>10 cm), que hacen parte del inventario forestal al 100% realizada para la caracterización florística. Cabe aclarar que debido a la naturaleza del área de muestreo, mayormente dominada por pastos limpios con destino al mantenimiento de semovientes, no se logró la caracterización de los 8 árboles por hectárea en las coberturas de pastos limpios. Por otro lado, la cobertura de pastos arbolado, constituidos en el proyecto por los cercos vivos que separan los lotes de la misma Finca Guadalupe, y establecidos en su mayoría por Maclura tictoria (dinde), Guazuma ulmifolia (guazimo), Gliricida sepium (mataratón) tampoco se cumplió con dicha intensidad pues la diversidad de este grupo de plantas es bajo. En la se presenta el número de unidades de muestreo (forófitos) evaluados en cada una de las coberturas vegetales presentes en el área. En el bosque ripario y vegetación secundaria alta, si se cumplió con la intensidad de muestreo propuesto por Gradstein et. al (2003).
- Flora-Epífitas Vasculares: Siguiendo el protocolo de Gradstein et. al (2003), a cada uno de los árboles hospederos (o forófitos) se le midieron variables dasométricas correspondientes (Circunferencia a la altura del pecho (CAP), altura total (HT) y altura comercial (HC). También se identificó hasta el nivel taxonómico posible por el equipo botánico en campo y cuando fue necesario, se recolectaron muestra botánicas para su identificación en herbario. La evaluación de las plantas epífitas vasculares se realizó teniendo en cuenta tres estratos de muestreo modificados a partir de la metodología de estratos verticales propuesta por Johansson (1974). El estrato 1 (E1) se define desde la base del árbol hasta los tres metros de altura; el estrato 2 (E2) se define entre los tres y seis metros; y el Estrato 3 (E3) desde seis metros en adelante. En cada uno de los estratos se evaluaron las morfo especies y el número de individuos correspondientes. Finalmente, cuando fue necesario, se realizó colección botánica de las morfoespecies que no pudieron ser identificas en campo, las cuales se procesaron teniendo en cuenta las técnicas necesarias de herborización, de manera similar que las plantas leñosas y herbáceas. Las muestras colectadas de plantas se guardaron en bolsas plásticas, se prensaron en papel periódico debidamente marcado y se alcoholizaron para su preservación hasta llegar al HUA, donde se procedió con el secado. La identificación taxonómica de los especímenes colectados se realizó utilizando literatura especializada para las familias botánicas de especies, así como guías de campo, claves taxonómicas y listados de especies (Bernal et al. 2015; Instituto de ciencias naturales 2004; En línea). Finalmente se utilizó el método de taxonomía comparativa con especímenes de referencia del HUA y herbarios virtuales nacionales e internacionales COL, Field Museum Herbarium, Kew, STRI, entre otros.
- Flora- Epífitas Musgo, Hepáticas y Líquenes: En el caso de especies de briófitos y líquenes, se utilizó la misma unidad de evaluación de las orquídeas y bromelias, siguiendo la metodología propuesta por Gradstein et. al (2003), quiénes indican que la evaluación de 3-5 árboles en una hectárea de cobertura, son suficientes para conocer entre el 75-80% de la diversidad de briófitos de un tipo de ecosistema de bosque tropical. Sin embargo, en el presente estudio se propuso la evaluación de ocho árboles hospederos por cada hectárea de cobertura vegetal natural a aprovechar, con el fin de ofrecer un balance más completo sobre la diversidad real de este tipo de organismos en el área de interés. En cada árbol hospedero (forófito) se evaluaron musgos, hepáticas, antocerotes, y líquenes presentes en el tronco a partir de una cuadricula de 25cm x 25cm, correspondiente a un área de 625 cm2 (Iwatsuki, 1960 en: (Pinzón, Linares, & Uribe, 2003), con el fin de estimar el área de cobertura en cm2. Para tomar las muestras se removieron fragmentos de aproximadamente 3x3 cm de las morfo especies diferentes identificables en el árbol, para su identificación en laboratorio (dado que por el tamaño de los briófitos y líquenes es necesario la identificación por medio de estereoscopio). Las muestras se depositaron en bolsas de papel, cada una rotulada con la información correspondiente a la parcela, forófito y porcentaje del área de cobertura sobre el tronco. Adicional a esto, se realizó una descripción general del lugar donde se encontraba el árbol, como la cercanía a fuentes hídricas y el tipo de cobertura vegetal. Las muestras de briófitos y líquenes colectadas y guardadas en las bolsas de papel se dejaron abiertas a temperatura ambiente para facilitar el proceso de secado; este grupo de plantas son muy pequeñas y crecen entremezcladas, por esto fue necesario el uso del estereoscopio y de pinzas de punta fina para realizar la separación de muestras. De cada espécimen separado, se elaboró una placa con el material necesario para la identificación a través de la observación en el microscopio óptico. Con la ayuda de claves, se identificaron los musgos hasta la categoría de familia, género y especies; para las hepáticas se determinaron las familias y en lo posible se llegó hasta género, por no disponer de claves para Colombia y llegar hasta la categoría de especie. La bibliografía especializada usada para musgos fue: Churchill & Linares (1995), Buck (1998) y Gradstein et al. (2001).
- Flora- Epífitas Especies terrestres (Bromelias, orquídeas, líquenes y briófitos): Para determinar la composición de las especies vedadas terrestres de bromelias, orquídeas, líquenes y briófitos, se siguió la metodología propuesta por Cámara & Díaz del Olmo (2013), quienes proponen la técnica MIFC (Inventario de formaciones vegetales fanerófitos y caméfitos) basada en el muestreo tipo RAP propuesto por Gentry (1982), que establece la evaluación de mínimo 10 parcelas de 50 m x 2 m para un área total de evaluación mínima de 0,1 ha por cada cobertura vegetal. Sin embargo, debido a la naturaleza de las coberturas vegetales dominantes en el proyecto y la destinación de mantenimiento de semovientes, esta intensidad de muestreo no se cumplió a cabalidad. Esta decisión se tomó debido a que el constate movimiento del ganado, pisoteo y alimentación vuelve bajo estas condiciones el establecimiento de este grupo de plantas poco probable. Por otro lado, la zona donde se ubica el proyecto presenta zonas anegadas, algunas de origen natural otras artificiales, que no permiten el establecimiento de briófitos y líquenes en suelo y/o roca, de igual forma, el constante pisoteo por parte del ganado no permite el establecimiento de este grupo de organismos. En este tipo de muestreo, la unidad de análisis es la parcela de 50 x 2 m, equivalente a 100 m2. Para la evaluación de bromelias y orquídeas, se toman datos de número de individuos por cada morfo especie, sustrato de crecimiento (suelo, roca, etc), y se georreferencia cada individuo. Además, se anotan características de las coberturas, tal como la asociación a fuentes hídricas, claros o eventos de disturbio entre otros. Para la evaluación líquenes y briófitos terrestres, se ubicaron al azar seis (6) sitios de muestreo dentro de la parcela, siendo 3 de sustrato terrestre y 3 para roca. En cada sitio, se estableció una plantilla de acetato transparente dividida en una cuadrícula de 25 x 25 cm, con el fin de estimar la cobertura en cm2 de las colonias de briófitos o líquenes terrestres encontrados. Las muestras se recolectaron con ayuda de una navaja, cuchillo o un martillo y cincel, dependiendo el sustrato, para luego depositarlos en bolsas de papel craft, las cuales fueron rotuladas con la información correspondiente a la parcela y el sustrato de colecta.
- Fauna- Anfibios y Reptiles: El método empleado para la caracterización de herpetofauna (Anfibios y reptiles) en el marco de desarrllo del EIA del proyecto Parque Solar Fotovoltaico Tepuy, consistió en una metodología integrativa que recoge las recomendaciones de Angulo et al. (2006) y McDiarmin (2012) implementando transectos de longitud variable de búsqueda libre con avistamiento, captura y registro de cantos, siendo prácticas ampliamente utilizadas para herpetofauna y con resultados fiables en muestreos que buscan una caracterización a nivel puntual. Los transectos fueron recorridos en horas de la mañana entre las 7:00 – 11:00 (diurno) y subsecuentemente muestreados entre las 18:00 y 22:00 (nocturno) en cada una de las tres coberturas vegetales (Bgr, Vs, P) identificadas en el AI, con el fin de detectar animales con diferentes períodos de actividad y uso de hábitat, los muestreos se realizaron del 29 de Mayo al 10 de Junio del 2018. En este caso, el trabajo en campo fue realizado por un equipo humano conformado por un profesional zoólogo-herpetólogo y un auxiliar de campo representado por un habitante de la vereda Purnio. Se realizó una búsqueda cuidadosa de anfibios y reptiles en todos los microhábitats posibles como: hojarasca, charcas, troncos caídos, cavidades del suelo o de los árboles. Los especímenes fueron capturados de forma manual, aunque también se dispuso de pinzas ofídicas para captura de serpientes, mientras que el almacenamiento temporal se realizó en bolsas ziploc y bolsas de tela dependiendo si el animal era un anfibio o reptil pequeño en el primer caso o un reptil de mayor tamaño en el segundo. Una vez capturado, se registraron datos de cobertura vegetal, microhábitat, georreferenciación, hora, número de individuos y finalmente se realizó una documentación fotográfica de cada uno de los individuos capturados, además de los no capturados. Dado que no se registraron especímenes que presentaran incertidumbre taxonómica, no se realizaron colectas definitivas en este estudio. Para la categorización taxonómica con fines del presente informe se adopta la propuesta de Batrachia: Lista de los anfibios de Colombia para el caso de anfibios (Acosta-Galvis 2018) y para los reptiles The Reptile Database (Uetz et al. 2018), ya que ambas presentan inclusión de las más recientes propuestas taxonómicas.
- Fauna- Aves: Las metodologías implementadas en la caracterización de la avifauna del proyecto, incluyen detección visual, auditiva y captura con redes de niebla, siendo métodos previamente estandarizados utilizados en inventarios y monitoreo de aves, diseñados por el Grupo de Exploración y Monitoreo Ambiental (GEMA) del Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (lAvH) (Villareal et al. 2006). Estas metodologías permiten la detección de especies, además de obtener datos para realizar análisis de abundancia de las especies y la interpretación de las densidades y tendencias de las poblaciones de aves en las zonas a muestrear (Villareal et al. 2006). Esta metodología permitió registrar las especies que fueron poco vocales (detección visual) y aquellas que no fueron fáciles de observar debido a que se encontraban en lugares de difícil detección (detección auditiva), para esto se realizaron recorridos por medio de transectos que abarcaron las diferentes coberturas vegetales presentes en el área de interés (Villareal et al. 2006). Cada cobertura fue muestreada durante tres (3) días y el transecto fue georreferenciado por un track, los recorridos se realizaron entre los días del 29 de mayo al 10 de junio de 2018. Estos recorridos se realizaron en las horas de mayor actividad de las aves, es decir, entre las 06:00 -10:30 h y entre las 14:30 -18:00 h (Villareal et al. 2006). Cada detección se anotó junto con la información asociada que se consideró pertinente: localidad, fecha, determinación taxonómica del individuo, hábitat donde fue detectado, estructura social, forma de detecciones (visuales, auditivas o ambas), entre otros. Los registros e identificaciones de las aves observadas durante los recorridos se hizo usando binoculares con un alcance de 10x50 mm. Ésta técnica consistió en instalar redes de niebla en áreas donde fuera difícil la detección visual de las aves y en zonas de especial interés para su captura. Las redes de niebla se ubicaron en sitios estratégicos como bordes de caminos, dentro del bosque, rastrojos y orillas de las quebradas, procurando el tránsito de las aves Ralph et al. 1996, Villareal et al. 2006). En total se instalaron tres redes de niebla con longitudes de 12 m x 2,5 m de altura en cada una de las coberturas. Las redes permanecieron abiertas durante dos (2) días en cada una de las coberturas muestreadas, en un máximo de ocho horas (06:00 - 10:30 horas y de 14:30 -18:00 horas) y fueron revisadas cada 20 minutos Cada individuo capturado, fue determinado hasta especie, soportado en bibliografía especializada como Hilty & Brown (1986), Restall et al. (2006) y McMullan et al. (2014), se le tomó un registro fotográfico y posteriormente fue liberado. Para la clasificación taxonómica de las aves se siguió la nomenclatura propuesta por el South American Classification Committee (SACC), perteneciente a la American Ornithologists Union (AOU), en el documento “A classification of the bird species of South America” de Remsen et al. (2018).
- Fauna- Mamíferos: La fase de campo de mastofauna se realizó incluyendo diferentes sitios con el propósito de analizar la mayor cantidad de microhábitats a los que los mamíferos estuvieran asociados. Se elaboró el inventario de mamíferos, en tres componentes: Las capturas de los Pequeños mamíferos no voladores se realizaron con 30 trampas tipo Sherman plegables de un tamaño de ancho 7.6 cm x alto 8.8 cm x largo 22.8 cm y dos (2) trampas tipo Tomahawk. Abarcando las zonas en el interior y el borde del bosque cubriendo tanto el estrato arbóreo como el suelo, principalmente en troncos caídos, junto a la base de los árboles, en cavidades formadas por las raíces de los árboles, junto a huecos y madrigueras. En todas las trampas se utilizó un cebo a base de maní, hojuelas, y esencias que trató de abarcar todos los gremios alimenticios posibles Todos los días, durante el muestreo, en horas de la mañana las trampas fueron revisadas y recebadas; cada vez que se presentó una captura, la trampa se ubicó en el mismo sitio después de ser lavada, o fue reemplazada por otra (Voss & Emmons, 1996), todas las trampas fueron marcadas con cinta reflectiva y mapeadas para su fácil ubicación. Con el propósito de evaluar la composición del ensamblaje de los mamíferos voladores se utilizaron cuatro (4) redes de niebla de tipo japonés de un tamaño 12m x 2,3m y 6m x 2,3m , dichas redes se ubicaron en el interior y borde de los fragmentos de bosque que abarcaran la zona de estudio, teniendo en cuenta sitios de refugio, tributarios, áreas abiertas y plantas asociadas a murciélagos. Las redes permanecieron abiertas desde las 18:00 a las 22:00 siendo monitoreadas cada media hora. Con el propósito de obtener información directa de la presencia de las especies de mamíferos grandes y medianos en las zonas seleccionadas se ubicaron tres (3) cámaras automáticas (Bushnell Trophy Cam) especialmente en sitios de aparente tránsito para estas especies, incluyendo caminos o bordes de bosque, para maximizar la probabilidad de captura (Maffei et al. 2002). Cada cámara se sujetó a un árbol a una altura de aproximadamente 30 cm desde el suelo. Las cámaras se programan con resolución de alta calidad, 5 MP, sensor activo día/noche, y duración de video 30 segundos. Cada episodio de captura se toma como un periodo continuo de muestreo de 24 horas, definiendo así unidades discretas de tiempo (Delgado-V. et al. 2011). Para el muestreo de mamíferos medianos y grandes se empleó la observación directa, por medio de recorridos diurnos y nocturnos, con el propósito de avistar directamente las diferentes especies y de manera indirecta como búsqueda de huellas y rastros (heces, pelos, madrigueras, hozaderos, etc. Los recorridos libres de búsqueda activa se realizaron a la par con otras actividades y se centró en la identificación de cualquier evidencia de mamíferos del área. Como parte de la detección indirecta se realizaron entrevistas informales a pobladores y trabajadores del proyecto eligiendo preferiblemente personas mayores y con un tiempo considerable en la zona. Para el reconocimiento de los mamíferos por parte de los pobladores fue utilizado material gráfico con ilustraciones de mamíferos neotrópicales (Emmons & Feer 1999; Tirira, 2007). A todos los individuos capturados se les tomó medidas corporales y datos reproductivos respectivos siguiendo los parámetros propuestos por Hall (1962), Emmons & Feer (1999); así mismo se realizó un registro fotográfico. Se registró la localidad, fecha y hora de captura. La determinación taxonómica del ejemplar en campo se hace utilizando claves taxonómicas como Husson (1962), Linares (1998), Muñoz (1995, 2001), Simmons & Voss (1998) y Emmons (1999). Los murciélagos se clasificaron según las categorías sexuales y de edad propuestas por Hall (1962) y Emmons & Feer (1999) de la siguiente manera:
- Ecosistemas acuáticos-Micro-algas bentónicas (fico-perifiton): La recolección del perifíton de los sitios de muestreo, se realizó al azar, en seis sustratos rocosos inmersos o expuestos al flujo en el cauce activo de la corriente de agua, distribuidos en un transecto de 100 m longitudinales. Se utilizó un cepillo plástico para la remoción de las algas adheridas y se realizaron seis réplicas de 36 cm2, para un área total muestreada de 216 cm2. Cada muestra se almacenó en un recipiente plástico opaco debidamente etiquetado y se preservó con una solución de Lugol (Kl-I2) al 10% (0,5 ml por cada 100 ml de muestra) Para el cálculo de la densidad del fico-perifiton en individuos/cm2, cada muestra se homogenizó y se extrajo una sub-muestra de 1 ml, la cual fue depositada en una cámara de conteo. Las micro algas se contaron bajo microscopio invertido (Boeco BIB-100T) en una magnificación de 400 aumentos, en 30 campos, siguiendo el método de campos al azar por medio de una tabla de números aleatorios previamente preparada. Además, se realizó un recorrido en zigzag por toda la superficie de la cámara y a los organismos encontrados, que no fueron hallados en el conteo se les asignó un valor de 1 para el cálculo de la densidad. Para la identificación taxonómica, se usaron claves especializadas tales como Bicudo y Bicudo (1970), Bicudo y Menezes (2006, 2017), Bourrelly (1970, 1988), Comas (1996), Cox (1996), Komárek y Anagnostidis (1986, 1989, 1999), Komárek y Fott (1983) y Round et al. (1990). Adicionalmente, se realizó un registro fotográfico de la diversidad de taxones presentes en la muestra analizada. Micro-algas planctónicas (fitoplancton): Para el muestreo del fitoplancton, se utilizó una botella Schindler con capacidad de 5 litros. La muestra resultó de la mezcla de colectas en tres puntos del cuerpo de agua (debido a que todos tenían poca profundidad y la superficie representa la columna de agua), integrando 15 litros de agua por sitio. La muestra colectada se agitó con el fin de homogeneizarla y de ella se retiró una sub-muestra de 600 ml para utilizarla en la estimación de la composición y densidad del fitoplancton. Cada muestra se almacenó en un recipiente plástico debidamente etiquetado y se preservó con una solución de Lugol (Kl-I2) al 10% (0,5 ml por cada 100 ml de muestra). Para calcular la densidad en individuos/ml, se utilizó el método de Utermohl (1958). Inicialmente, sedimentación de una sub-muestra de 50 ml y, posteriormente, traspaso a una cámara de sedimentación de 10 ml de capacidad, para sedimentación por un tiempo de 3 horas por cada centímetro de altura de la cámara. Las micro-algas se contaron bajo microscopio invertido (Boeco BIB-100T) en una magnificación de 400 aumentos, en 30 campos, siguiendo el método de campos al azar por medio de una tabla de números aleatorios previamente preparada. Además, se realizó un recorrido en zigzag por toda la superficie de la cámara y a los organismos encontrados, que no fueron hallados en el conteo se les asignó un valor de 1 para el cálculo de la densidad. Para la identificación taxonómica, se usaron claves especializadas tales como Bicudo y Bicudo (1970), Bicudo y Menezes (2006, 2017), Bourrelly (1970, 1988), Comas (1996), Cox (1996), Komárek y Anagnostidis (1986, 1989, 1999), Komárek y Fott (1983), y Round et al. (1990). Adicionalmente, se realizó un registro fotográfico de la diversidad de taxones presentes en la muestra analizada. Macrófitas acuáticas: En los sitios de muestreo del AI del proyecto Parque Solar Fotovoltaico Tepuy se realizó un recorrido alrededor de los jagüeyes, para registrar e identificar especies de macrófitas acuáticas. Luego, se estimó su porcentaje de cobertura utilizando un cuadrante de 1 m2 y efectuando 20 réplicas distribuidas alrededor del cuerpo de agua, hasta obtener un área de 20 m2 de muestreo. Se realizó un registro fotográfico de las plantas, y con mayor detalle las que no se pudieron identificar en campo. Las plantas fueron taxonómicamente identificadas por comparación botánica mediante el uso de manuales y claves específicas (Schmidt- Mumm, 1988, Bartholomaüs et al. 1990, Cook 1990, Kahn et al. 1993, Velásquez 1994, Rodulio 1999, Crow 2002, Posada-García y López-Muñoz 2011 y APG 2016). Zooplancton: Para evaluar la composición y densidad del zooplancton, se recolectó una muestra integrada de 15 litros de agua, proveniente de tres puntos del cuerpo de agua a evaluar, mediante una botella Schindler de cinco litros de capacidad. La muestra recolectada se concentró pasándola por un tamiz de 38 µm de poro. Cada muestra se almacenó en un vial de 50 ml de capacidad debidamente etiquetado y se preservó con una solución de transeau (agua, etanol al 90% y formol al 40% en proporciones 6:3:1 respectivamente) en proporción 1:1. Usando un microscopio óptico bifocal (Nikon Elipse E100) y una cámara de Sedgwick-Rafter se contaron seis sub-muestras de 1,5 ml y hasta un máximo total de 4,5ml a partir de un total de muestra de 50ml, filtrado de 15 L integrados de la columna de cada cuerpo de agua muestreado. Cada alícuota debe poseer un mínimo de 200 individuos adultos de los dos taxones más abundantes o 400 individuos adultos en total. Debido a la naturaleza de las muestras, cuyo contenido de sólidos suspendidos era muy alto, se optó por un conteo de al menos un 8% del total de la muestra (modificado de Bottrell et al. 1976). Macroinvertebrados acuáticos (bentos): La recolección de los macroinvertebrados acuáticos, se realizó en seis sitios del AI del proyecto. En los sitios bajo condición léntica (jagüeyes) se muestreó con una draga Eckman, y en cada uno se realizaron cuatro recolectas del bentos, obteniendo un total de 900 cm2; para los sitios bajo condición lótica (sitio 4_Quebrada Yeguas) se muestreó en un transecto longitudinal de 100 m, realizando 10 arrastres aleatorios con una red Surber de 30 cm de lado (900 cm2). El material recolectado se depositó en bolsas plásticas, a las cuales se les agregó alcohol al 70% para la preservación de los especímenes y luego fueron rotuladas con la información del sitio y se transportaron al laboratorio en neveras para su posterior separación e identificación. Las muestras fueron separadas visualmente y se contabilizaron e identificaron hasta el máximo nivel taxonómico posible (género), utilizando un estereoscopio y claves taxonómicas especializadas (Johannsen 1977, Machado 1989, Merrit y Cummins 1996, McCafferty 1998, Posada-García y Roldán-Pérez 2003, Álvarez 2005, Manzo 2005, Domínguez y Fernández 2009, Flowers y De La Rosa 2010). Ictiofauna: En el caso de la quebrada Yeguas se combinaron dos aparejos de pesca: atarraya de ojo de malla de 1 cm (30 lances por transecto) y electro pesca (SUSAN-1020 NP). Este último, según Maldonado-Ocampo et al. (2005), es el método más adecuado para quebradas, ya que estos sistemas se caracterizan por lechos rocosos, pedregosos y flujo turbulento, donde la atarraya es poco efectiva. Para el caso de los Jagüeyes y el Pantano solo se realizó pesca con atarraya, ya que es el arte de pesca más efectivo en estos sistemas. En el caso de los sistemas que estaban secos y solo se encontraban pequeñas charcas (huellas del ganado) se utilizó una red de mano. Los individuos capturados fueron almacenados temporalmente en un balde con aireador para identificación en campo corroborando algunos caracteres utilizando el Manual de Identificación de Peces de los Andes (Maldonado-Ocampo et al. 2005). Los ejemplares fueron fotografiados con una cámara digital (Canon SX500 IS), pesados en una balanza con error de ± 0,1 g y medidos en su longitud estándar con un calibrador pie de rey (Ubermann) con error de ± 0,01 mm. Posterior a esto, los peces fueron liberados en el sistema que fueron capturados. La información biológica obtenida fue anotada en un cuaderno de campo para su posterior análisis.
Additional info
Este conjunto de datos fue publicado con el apoyo del proyecto CESP “OpenPSD – Engage and promote the private sector in open biodiversity data publication (ID CESP2019-004)”, y la alianza con la Asociación Nacional de Empresarios de Colombia (ANDI) a través de su iniciativa “Biodiversidad y Desarrollo” (Datos abiertos sobre biodiversidad desde el sector empresarial). Agradecemos la colaboración y el incentivo para compartir datos desde el sector empresarial. This dataset was published with support of the CESP project “OpenPSD – Engage and promote the private sector in open biodiversity data publication (ID CESP2019-004)”, and the alliance with the National Business Association of Colombia (ANDI) through its initiative "Biodiversity and Development" (Biodiversity open data from the private sector). We are grateful with the colaboration and incentive to share data from the private sector.Taxonomic Coverages
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Plantaecommon name: Cotorra carisucia rank: kingdom
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Bryophytarank: phylum
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Charophytarank: phylum
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Chlorophytarank: phylum
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Marchantiophytarank: phylum
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Tracheophytarank: kingdom
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Fungi
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Ascomycotarank: phylum
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Annelidarank: phylum
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Arthropodarank: phylum
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Chordatarank: phylum
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Molluscarank: phylum
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Animaliarank: kingdom
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Chromistarank: kingdom
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Cryptophytarank: phylum
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Myzozoarank: phylum
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Ochrophytarank: phylum
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Protozoarank: kingdom
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Euglenozoarank: phylum
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Cyanobacteriarank: phylum
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Bacteriarank: kingdom
Geographic Coverages
Bibliographic Citations
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