Monitoreos hidrobiológicos del Valle del Cerrejón en cuatro municipios del departamento de La Guajira

Study Extent

En el área de estudio se encuentran los municipios de Albania, Hatonuevo y Barrancas. En términos hidrológicos la cuenca del río Ranchería ubicada en la zona hidrográfica del Caribe, se convierte en el eje hídrico más importante del departamento de La Guajira y de esta región; su caudal se nutre de las corrientes que bajan de la Sierra Nevada de Santa Marta y en menor medida de arroyos de carácter estacional que descienden de la Serranía de Perijá. El Valle que recorre este río hacia el mar es considerado de gran importancia en las interconexiones de la fauna propia de ambas serranías. Esta convergencia se presenta en gran medida por las redes acuáticas que se dan en el departamento como lo son: Arroyo Tabaco, Arroyo Paladines, Arroyo Bruno, Arroyo Cerrejón, Arroyo Palomino, Arroyo Aguas Blancas, Arroyo Caurina, río Ranchería y Embalse del Muerto.

Sampling

Los monitoreos hidrobiológicos se están realizando trimestralmente en 25 estaciones ubicadas en el río Ranchería, Embalse del Muerto y diferentes arroyos ubicados en el Valle de la Sierra Nevada de Santa Marta y Serranía de Perijá. La metodología se dividió en dos componentes para cada uno de los cuerpos de agua y contó con 25 estaciones (Limnología e Ictiofauna). Las estaciones se distribuyeron en E1 a E6 en el Arroyo Tabaco; E7 y E8 Arroyo Paladines; E9 y E 10 Arroyo Bruno; E11 y E12 Arroyo Cerrejón; E13 y E14 Arroyo Palomino, E15 a E20 Río Ranchería; E21 y E22 Arroyo Aguas Blancas; E23 y E24 Arroyo Caurina y 25 Embalse del Muerto.

Method steps

1. LIMNOLOGIA
2. Fitoplancton: Las muestras superficiales simples (100 L) se recolectaron con ayuda de un balde y la red de fitoplancton (23 µm). Una vez se realiza la colecta, se procede al lavado de la malla con el frasco lavador (agua destilada) para luego envasar el filtrado en los frascos ámbar de 135 mL. A continuación, se realizó la identificación y conteo del fitoplancton mediante el microscopio óptico utilizando aumentos entre 10 y 100X; el conteo se realizó sobre una cámara de Sedgewik-Rafter (APHA, 2012). Por último, para la metodología usada en la identificación de los organismos fitoplanctónicos se siguieron las descripciones realizadas por Bourrelly (1972), Bicudo & Bicudo (1970), González (1998), Fánes Treviño (2008), Yacubson (1969), Yacubson (1974), Yacubson & Bravo (1982-1983), Ortega (1984), Parra et al. (1982-1983).
3. Zooplancton: Las muestras superficiales simples (100 L) se recolectaron en el centro, con ayuda de un balde y la red de zooplancton (55 µm). Una vez se realiza la colecta, se procede al lavado de la malla con el frasco lavador (agua destilada) para luego envasar el filtrado en los frascos ámbar de 135 mL. A continuación, se realizó la identificación y conteo del fitoplancton mediante el microscopio óptico utilizando aumentos entre 10 y 100X; el conteo se realizó sobre una cámara de Sedgewik-Rafter (APHA,2012). La metodología usada en la identificación se basó en la observación de estructuras externas, comparándolas con referencias taxonómicas de Gaviria (1988), Gaviria (1989), Gaviria (1993), Gaviria (1994), Gaviria (2000) y Koste (1978).
4. Perifiton: El muestreo de la comunidad del perifiton se realizó estableciendo distintas estaciones de muestreo tratando de seguir un gradiente de profundidad. En las estaciones se ubicó un cuadrante de 3 cm^2 y se colectaron objetos duros presentes (piedras, guijarros, etc.). Una vez establecidos los cuadrantes, se realizaron once replicas para completar 99 cm^2 (Rivera Rondon & Zapata Anzola, 2009), a cada una se les realizó un raspado de película y se guardaron en frascos plásticos de ámbar con solución Kew (agua destilada, alcohol y glicerina) (APHA, 2012), para su posterior análisis en laboratorio. En el laboratorio se realizó la observación en barrido de placas SedgeWick-Rafter (SR) con un microscopio óptico. En la identificación de las comunidades de perifiton se utilizaron trabajos de Bicudo y Menezes (2006), Bicudo & Bicudo (1970), Parra, Rivera, Gonzalez, Dellarossa, & Orellana (1982-1983), Tell (1985), Whitford & Schumacher (1969).
5. Macroinvertebrados bentónicos: El muestreo de la comunidad de macroinvertebrados bentónicos se realizó de acuerdo con el sustrato de cada estación. En estos predominaron los cantos rodados, arena y hojarasca, por lo que se dio uso a una draga con capacidad de 0.03 m^2 y una red Surber con área de muestreo 0.09 m^2. El muestreo de la red Surber (250 µm ojo de malla/ 0.09 m^2) se ubicó en el lecho del sistema en contra de la corriente. Una vez se estableció la red, se procedió a remover el sustrato haciendo que los organismos flotaran a la superficie y fueran arrastrados por la corriente al interior de la red (Roldan Pérez & Ramirez Restrepo, 2008). A continuación, se depositaron los organismos en bolsas de cierre hermético para luego ser fijadas. Posteriormente se realizó una depuración de fragmentos de vegetación, rocas y basura. Luego a esto, se removieron los organismos de la red con pinceles y pinzas entomológicas, y se depositaron en frascos debidamente rotulados y con preservantes. Por otro lado, el muestreo de Draga tipo Petersen con área de 0.03 m^2 se hicieron tres lances hasta completar un área de 0.09 m^2 y se tomaron dos muestran para un total de 0.18 m^2. Se empezó lanzado la draga de agua y verificando que esta llevara la cubierta abierta al fondo. A continuación, se subió y abrió encima de una superficie plástica con capacidad para depositar el material colectado. Una vez se obtiene las muestras, se realizó el lavado haciendo las pasar por tamices de 710 µm, 500 µm y 250 µm, enjuagando con agua y evitando que esta cayera directamente sobre la muestra después de haberla lavado. El área total de muestreo en los dos procedimientos por estación fue de 0.36 m^2. La identificación de las taxas se realizó mediante observación de estructuras morfológicas, aplicando claves y referenciando los organismos en: Fernandez & Dominguez (2001), Dominguez & Fernandez (2009), Springer, Hanson, & Ramirez (2010), Gutierrez & Dias (2015) McCaffrey (1981), Roldan Perez (1996), Roldán & Ruiz (2001).
6. Macrófitas: El muestreo consistió en recorridos en forma de zigzag de una orilla a la otra en los arroyos. A medida que se hizo el recorrido se recogieron las muestras y se obtuvieron las abundancias mediante el uso del marco de PVC de 0.25 m^2 completando 10 m^2. A continuación, se procedió a la identificación en campo mediante la utilización de claves e ilustraciones taxonómicas. Para las macrófitas que no se lograron identificar, se hizo una colecta de plantas en crecimiento óptimo con las flores y/o frutos presentes, y en algunos casos en toda la planta, se conservaron en solución Kew y refrigeradas.
7. ICTIOFAUNA
8. En el muestreo de muestras ícticas se emplearon: Dos atarrayas. La primera con área efectiva de pesca de aproximadamente 2.5 m de diámetro, construida con nylon multifilamento en tejido de 2 cm de ojo de malla. La segunda con un área de 3.5 m de diámetro construida en nylon transparente y un ojo de malla de 3.5 cm; red de malla con dimensiones de 3 m x 1.3 m de altura y un ojo de malla de 1cm; trasmallo de 50 m de largo por 2 m de alto con plomada, boya y ojo de malla de 2 pulgadas en nylon trenzado; anzuelos pequeños con cordel en sitios de mayor profundidad y dos redes de mano nasas. La primera en forma cuadrada con un área de apertura 30 cm, la segunda red de forma triangulas y un área de apertura de 30 cm. Estas redes se usaron en áreas donde las anteriores redes no logran ser efectivas.
9. Para las descripciones cuantitativas del ensamblaje íctico del río y los arroyos, se estimó como esfuerzo de pesca 10 lances para cada atarraya y 10 arrastres con la red en cada estación. Por otro lado, el embalse se caló por dos horas el trasmallo, mientras se hacía la misma cantidad de lances de atarraya en las orillas. Las capturas de red con nasas y uso de anzuelos dependían de un sitio propicio para su ejecución. Se estimó un tiempo de faena aproximado de 3 horas por cada estación. Una vez se realiza la colecta, se mantuvieron los peces vivos en un recipiente de plástico con agua del medio. Posteriormente, se realizó su medición con una precisión de 1 mm y fueron pesado en una blanca electrónica con precisión de 0.1 gr para individuos pequeños y de 1 gr para individuos que superaban este límite de sensibilidad. Los individuos fueron devueltos a su medio y únicamente se sacrificaron individuos escogidos para las disecciones con el objetivo de extraer estómagos y estructuras sexuales para análisis de laboratorio. La metodología de identificación consistió en tomar notas de las principales características merísticas, morfométricas y respectivo registro fotográfico. Además, se usaron diversas listas, claves e icnografías especializadas como: (Eigenmann, 1922), (Miles, 1947) (Dahl, 1971), Nelson (1984), (Maldonado-Ocampo et al., 2005), (Maldonado-Ocampo et al., 2008), entre otros.

Este conjunto de datos comprende 7.423 registros biológicos, agrupados en los reinos Animalia (66.26%), Plantae (5.11%), Bacteria (3.05%), Chromista (15.2%) y Protozoa (10.38%). Un 0.12% está determinado a nivel de subespecie, un 41.78% a especie, 55.35% a género y 2.74% a categorías superiores. El phylum Anelida se encuentra agrupado en una clase, una ordenes, dos familias y un género.

1. Glossiphoniidae
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2. Naididae
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El phylum Arthropoda se encuentra agrupado en cuatro clases, diez ordenes, 37 familias, 54 géneros. El 90.13% se encuentra clasificado hasta género.

1. Aeshnidae
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2. Atyidae
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3. Baetidae
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4. Belostomatidae
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5. Caenidae
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6. Calopterygidae
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7. Ceratopogonidae
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8. Chironomidae
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9. Coenagrionidae
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10. Corydalidae
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11. Culicidae
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12. Dytiscidae
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13. Elmidae
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14. Glossosomatidae
    rank: family
15. Gomphidae
    rank: family
16. Gyrinidae
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17. Helicopsychidae
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18. Hippoboscidae
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19. Hydrophilidae
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20. Hydropsychidae
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21. Hydroptilidae
    rank: family
22. Leptoceridae
    rank: family
23. Leptohyphidae
    rank: family
24. Leptophlebiidae
    rank: family
25. Libellulidae
    rank: family
26. Limoniidae
    rank: family
27. Naucoridae
    rank: family
28. Oligoneuriidae
    rank: family
29. Perlidae
    rank: family
30. Philopotamidae
    rank: family
31. Polymitarcyidae
    rank: family
32. Psephenidae
    rank: family
33. Scirtidae
    rank: family
34. Simuliidae
    rank: family
35. Stratiomyidae
    rank: family
36. Tabanidae
    rank: family
37. Trichodactylidae
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El phylum Cercozoa se encuentra agrupado en una familia, un género y una especie.

1. Trinematidae
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El phylum Charophytas se encuentra agrupado en dos clases, dos ordenes, cinco familias, siete géneros, dos especies.

1. Characeae
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2. Closteriaceae
   rank: family
3. Desmidiaceae
   rank: family
4. Peniaceae
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5. Zygnemataceae
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El phylum Chlrophyta se encuentra agrupado en dos clases, cuatro ordenes, cinco familias, nueve géneros, dos especies y dos subespecies. El 82.11% se encuentra determinado a nivel de género.

1. Chlorellaceae
   rank: family
2. Hydrodictyaceae
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3. Oedogoniaceae
   rank: family
4. Scenedesmaceae
   rank: family
5. Volvocaceae
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El phylum Chordata se encuentra agrupado en una clase, cinco ordenes, 20 familias, 37 géneros y 34 especies. El 87.46% se encuentra determinado a nivel de especie.

1. Anostomidae
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2. Auchenipteridae
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3. Bryconidae
   rank: family
4. Centropomidae
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5. Characidae
   rank: family
6. Cichlidae
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7. Crenuchidae
   rank: family
8. Ctenoluciidae
   rank: family
9. Curimatidae
   rank: family
10. Erythrinidae
    rank: family
11. Gasteropelecidae
    rank: family
12. Gobiidae
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13. Heptapteridae
    rank: family
14. Loricariidae
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15. Megalopidae
    rank: family
16. Parodontidae
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17. Pimelodidae
    rank: family
18. Poeciliidae
    rank: family
19. Prochilodontidae
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20. Trichomycteridae
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El phylum Cyanobacteria se encuentra agrupado en una clase, dos ordenes, ocho familias y 12 géneros.

1. Borziaceae
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2. Chamaesiphonaceae
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3. Chroococcaceae
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4. Microcoleaceae
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5. Nostocaceae
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6. Oscillatoriaceae
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7. Pseudanabaenaceae
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8. Spirulinaceae
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El phylum Mollusca se encuentra agrupado en 2 clases, 3 ordenes, 7 familias, 8 géneros y 2 especies. El 79.79% se encuentra clasificado hasta género.

1. Amnicolidae
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2. Ampullariidae
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3. Cochliopidae
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4. Physidae
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5. Planorbidae
   rank: family
6. Sphaeriidae
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7. Thiaridae
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El phylum Myzozoa se encuentra agrupado en una clase, un orden, una familia, un género.

1. Gymnodiniaceae
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El phylum Ochrophyta se encuentra agrupado en 1 clase, diez ordenes, 13 familias, 15 géneros y cinco especies. El 88.88% se encuentra determinado a nivel de género.

1. Bacillariaceae
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2. Biddulphiaceae
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3. Catenulaceae
   rank: family
4. Cocconeidaceae
   rank: family
5. Cymbellaceae
   rank: family
6. Eunotiaceae
   rank: family
7. Fragilariaceae
   rank: family
8. Gomphonemaceae
   rank: family
9. Naviculaceae
   rank: family
10. Pinnulariaceae
    rank: family
11. Pleurosigmataceae
    rank: family
12. Rhopalodiaceae
    rank: family
13. Surirellaceae
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El phylum Rotifera se encuentra agrupado en una clase, tres ordenes, diez familias, 16 géneros,14 especies y 1 subespecie. El 81.97% se encuentra determinado a nivel de género.

1. Brachionidae
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2. Euchlanidae
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3. Gastropodidae
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4. Hexarthridae
   rank: family
5. Lecanidae
   rank: family
6. Lepadellidae
   rank: family
7. Mytilinidae
   rank: family
8. Synchaetidae
   rank: family
9. Testudinellidae
   rank: family
10. Trichocercidae
    rank: family
11. Trochosphaeridae
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El phylum Tracheophyta se encuentra agrupado en dos clases, siete ordenes, nueve familias, diez géneros y siete especies. El 66.1% se encuentra determinado a nivel de género.

1. Apiaceae
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2. Araceae
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3. Cyperaceae
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4. Hydrocharitaceae
   rank: family
5. Nymphaeaceae
   rank: family
6. Onagraceae
   rank: family
7. Phyllanthaceae
   rank: family
8. Pontederiaceae
   rank: family
9. Typhaceae
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El reino Protozoa se encuentra agrupado en dos phylum, tres clases, tres ordenes, seis familias, nueve géneros y 14 especies. El 52.86% se encuentra determinado a nivel de especie.

1. Arcellidae
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2. Centropyxidae
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3. Difflugiidae
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4. Euglenaceae
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5. Phacidae
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El departamento de la La Guajira esta dividido en tres zonas: Alta, Media y Baja Guajira. La Alta Guajira se sitúa en el extremo norte hasta el Cabo de la vela y el sitio Matajuna. La media Guajira abarca la parte central del departamento, cubriendo los municipios de Riohacha, Maicao y parte de Uribia. La Baja Guajira corresponde a la Sierra Nevada de Santa Marta y a los Montes Oca (IGAP & CORPOGUAJIRA, 2009). En el área de interés se encuentran los municipios de Albania, Hatonuevo y Barrancas. En términos hidrológicos la cuenca del río Ranchería ubicada en la zona hidrográfica del Caribe, se convierte en el eje hídrico más importante del departamento de La Guajira y de esta región; su caudal se nutre de las corrientes que bajan de la Sierra Nevada de Santa Marta y en menor medida de arroyos de carácter estacional que descienden de la Serranía de Perijá. El valle que recorre este río hacia el mar es considerado de gran importancia en las interconexiones de la fauna propia de ambas serranías. Esta convergencia se presenta en gran medida por las redes acuáticas que se dan en el departamento como lo son: Arroyo Tabaco, Arroyo Paladines, Arroyo Bruno, Arroyo Cerrejón, Arroyo Palomino, Arroyo Aguas Blancas, Arroyo Caurina, río Ranchería y Embalse del Muerto.