Lista de la biota presente en el humedal Toqui-Toqui, departamento del Tolima

Study Extent

El humedal Toqui-Toqui se encuentra localizado en el municipio de Piedras, departamento del Tolima, ocupa una extensión aproximada de 26 ha en una altura promedio de 276 m.s.n.m. y 176.96 ha en la zona definida como la microcuenca del humedal. Pertenece a la subzona hidrográfica río Totare.

Sampling

MACROINVERTABRADOS: Inspección en las márgenes con red surber y removiendo raíces de material vegetal. HERPETOS: La metodología de campo utilizada para la captura de los organismos fue la de Inventario completo de especies mediante búsqueda libre y sin restricciones, propuesta por Angulo et al. (2006) y apoyada por la técnica de transectos auditivos e inspección en sitios de apareamiento propuesta por Lips et al. (2001); las cuales se utilizaron de manera intensiva con el fin de capturar y registrar la mayor cantidad de animales y cantos (anuros) en el sitio de muestreo. MASTOFAUNA: En el humedal no se han registrado estudios de mamíferos. Sin embargo, se realizó un acercamiento mediante la recopilación de la información secundaria disponible. Se hace indispensable realizar un estudio con información primaria necesaria para conocer y evaluar el uso que ejercen las especies de mamíferos sobre el humedal. FLORA: Se hicieron parcelas rectangulares tipo RAP‟S, donde se cuantificaron todas y cada una de las especies, tanto herbáceas como leñosas. De cada especie, se colectaron 2-3 muestras para la colección del Herbario TOLI. PLANCTON: Se utilizaron redes de malla fina. Se elaboró una ficha de campo en donde se registraron los datos de la localidad y del hábitat de la zona muestreada.

Quality Control

En el proceso de estructuración y validación de los datos, se realizó el control de la calidad de la información. A continuación, se enumeran los procesos asociados a esta actividad: 1. Revisión de la información documentada asociada a los datos biológicos; 2. Estructuración de los datos en el estándar Darwin Core (DwC) según elementos, definiciones y vocabularios controlados; 3. Validación y limpieza de la información consignada en el DwC, 3.1. Corrección de errores de tipeo, para esta tarea se usó OpenRefine, adicionalmente se identificaron datos erróneos como sinonimias, con el uso de Species Matching, COL | The Catalogue of Life, y se utilizó para las plantas Tropicos - Home (tropicos.org) y Taxonomic Name Resolution Service; 4. Finalmente, la base datos DwC se validó haciendo uso del Validador de datos - GBIF.

Method steps

1. MACROINVERTEBRADOS i. Métodos de campo: Para la colecta de formas inmaduras en los cuerpos de agua lénticos, se realizó una inspección en las márgenes utilizando la red surber y removiendo las raíces de material vegetal flotante y filtrando a través del tamiz. El material obtenido, se colocó en frascos plásticos y se fijó con formol al 10%, se etiquetó y se llevó una ficha de campo. ii. Métodos de Laboratorio: Los organismos capturados se separaron en alcohol al 70% y se determinaron al más bajo nivel taxonómico posible con un estereomicroscopio Olympus SZ40 y un microscopio Olympus CH30. Para la determinación taxonómica se realizaron micropreparados del material colectado y se emplearon las claves y descripciones de McCafferty (1981), Machado (1989), Needham y Needham (1991), Rosemberg y Resh (1993), Lopretto y Tell (1995), Roldán (1996, 2003), Muñoz-Q. (2004), Merrit y Cummins (2008), Domínguez y Fernández (2009) y posteriormente fueron ingresados a la Colección Zoológica de la universidad del Tolima CZUT-Ma. iii. Análisis de Datos: Se determinó la abundancia relativa a partir del número de individuos colectados y su relación con el número total de individuos de la muestra. Se evaluó además la calidad del agua a partir del método BMWP/Col. el cual es un método sencillo y rápido para evaluar la calidad del agua usando los macroinvertebrados como bioindicadores. El método solo requiere llegar hasta el nivel de familia y los datos son cualitativos (presencia o ausencia).
2. HERPETOS i. Métodos de campo. i.i. Anfibios: Para el caso de anfibios, se realizó un muestreo diario dividido en dos recorridos: el primero desde las 9:00 hasta las 11:00 horas y el segundo desde las 15:00 a las 17:00 horas, con el fin de capturar especies de actividad diurna e identificar hábitats estratégicos para el encuentro de los animales de estudio en trayectos nocturnos (como bosque, potrero, pastizal, etc). Los muestreos nocturnos se ejecutaron desde las 18:00 hasta las 22:00 horas. Para cada animal capturado se elaboró una ficha de campo en la cual se especificaron características morfológicas, como patrones de coloración, longitud rostro-cloacal (LRC) y se realizó una pequeña descripción del lugar de captura y de las condiciones ambientales como la presencia de cuerpos de agua, el tipo de sustrato donde se encontraba el organismo, temperatura ambiente, condiciones climáticas y humedad relativa. Los animales recolectados fueron sacrificados y preservados siguiendo la metodología propuesta por McDiarmid (1994), la cual consiste en: Anestesiar el animal con etanol 10% hasta evidenciar paro del ritmo cardiaco, y posicionar el ejemplar en una bandeja con una toalla remojada en formol analítico al 10% y dejar en reposo durante un período de 24 horas, momento en el cual se fija el individuo. Ya que la postura del ejemplar es importante, este proceso debe realizarse en la menor brevedad posible. i.ii. Reptiles: El método de colecta que se implementó para reptiles es el de búsqueda por encuentro visual, complementado por la metodología de Pisani y Villa (1974), que consistió en la búsqueda en troncos huecos, árboles caídos, cortezas flojas, tumultos de ramas, hojarasca, bajo las rocas flojas, grietas de peñascos y el suelo en general. Para el caso de serpientes no venenosas, se colectaron con la ayuda de un gancho herpetológico o sujetándolas de la cabeza con la mano y para serpientes venenosas se procedió a la captura con pinzas herpetológicas, con el fin de inmovilizar al animal y que este no pueda atacar. Los individuos recolectados fueron transportados en sacos de lona o mantas de tela y en el caso de las serpientes venenosas se realizó el sacrificio directamente en campo. Para el procesamiento de los ejemplares se empleó el método sugerido por Casas-Andreu et al. (1991); los organismos capturados fueron sacrificados de la manera menos dolorosa posible; para éste caso se le inyectó lidocaína directamente en el corazón (serpientes y lagartos), lo cual produce una muerte rápida, para las especies de geckos y pequeños lagartos se realizó el sacrificio mediante inmersión en alcohol al 10%. Posteriormente, los organismos fueron fijados en formol al 10%, las serpientes enrolladas en forma de anillos y los lagartos en su posición natural (Casas–Andreu et al., 1991). ii. Métodos de laboratorio: Posterior a la captura y sacrificio de los animales recolectados, estos fueron preservados siguiendo la metodología propuesta por McDiarmid (1994), la cual consiste en: - Etiquetar el individuo y pasarlo a un recipiente con formol analítico al 10% por 15 días. - Lavar con agua pura por dos horas. - Colocar los individuos en etanol 70% por tres días. - Conservar los individuos en etanol al 70% limpio. Luego los organismos se lavaron en agua destilada durante 24 horas para después ser preservados en formol al 10% durante 15 días, pasado éste tiempo los organismos se lavaron en agua destilada por 24 horas y después llevados a etanol al 70% durante una semana. Pasados los 7 días, los organismos fueron lavados nuevamente con agua destilada por 24 horas y después se llevaron a un recipiente final con etanol al 70%. Una vez preservados los organismos, éstos fueron determinados taxonómicamente a través de diagnosis descriptivas para cada una de las especies y mediante comparación con las muestras de la Colección Zoológica de Referencia de la Universidad del Tolima, sección herpetología, y los registros fotográficos de bases de datos disponibles en internet. Los nombres científicos y arreglos sistemáticos de las especies siguen las normas y parámetros de Amphibian Species of the World (Frost, 2016), AmphibianWeb (2016) y The TIGR Reptile Database (Uetz y Hošek, 2016). Para establecer la presencia de especies catalogadas bajo algún riesgo de amenaza de extinción local, regional o nacional, se compararon el listado de anfibios presentes en la zona con el listado del libro rojo de anfibios de Colombia (Rueda–Almonacid et al., 2004) y se revisó el estado de todas las especies en la base de datos de Global Amphibian Assessment. Para el caso de los reptiles se revisó el libro rojo de reptiles de Colombia (Castaño, 2002) y la lista roja de la UICN (2016). iii. Análisis de datos: Se realizó un análisis de la comunidad y la diversidad, revisión del estatus poblacional, endemismos y revisión de especies de importancia económica y de interés cultural, mediante la revisión de documentos, se obtuvo información de estudios faunísticos en el área. Como fuentes principales de información secundaria se cita el documento “Biodiversidad Faunística de los Humedales del departamento del Tolima” (Reinoso-Flórez et al., 2010), los informes técnicos sobre identificación, caracterización, zonificación y planes de manejo de los humedales en el departamento del Tolima, elaborados por la Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica) y la revisión de los ejemplares de anfibios y reptiles depositados en la Colección Zoológica de la Universidad del Tolima, secciones anfibios y reptiles CZUT-A y CZUT-R respectivamente. Además, se obtuvo información de estudios faunísticos en las áreas aledañas o de incidencia directa al humedal en cuestión. La información primaria se recolectó mediante observaciones y capturas directas a lo largo del área de influencia, como se explicó con anterioridad en los métodos de campo.
3. MASTOFAUNA En el humedal no se han registrado estudios de mamíferos, sin embargo se realizó una aproximación sobre la riqueza y diversidad de la mastofauna que posiblemente se pueda presentar en el humedal. Este acercamiento se realizó mediante la recopilación de la información secundaria disponible. De esta manera, se revisaron los datos y fuentes secundarias e informes oficiales de gestión de CORTOLIMA, actualizaciones de listados de la mastofauna en Colombia registrada en Solari et al. (2013) y García-Herrera et al. (2015) para el Bosque Seco Tropical del Tolima. Se consideran los pequeños mamíferos no voladores, todas las especies clasificadas en las ordenes de marsupiales Didelphimorphia y los placentarios Rodentia.
4. FLORA i. Métodos de campo: En la zona de estudio se hicieron parcelas rectangulares tipo RAP‟S, donde se cuantificaron todas y cada una de las especies que se encontraron allí, tanto herbáceas como leñosas. Para los individuos leñosos se registrarán los datos de abundancia, altura total, altura de reiteración, diámetro del tronco a la altura del pecho (DAP, en centímetros) y ubicación dentro de la parcela, datos que nos permitirán más adelante la realización de perfiles los cuales nos permiten ver de una manera fácil la estratificación del bosque (Melo y Cruz, 2003). En cada levantamiento se registró la información sobre localidad, la fecha de realización, la pendiente aproximada en grados, la altitud y otros factores según (Álvarez ,1993; Melo y Cruz, 2003). En el parámetro DAP se seguirá los rangos propuestos para análisis estructural en bosque Neotropical de Montaña (Contreras et al., 1999). De cada especie registrada en campo, previamente descrita, se colectaron 2-3 muestras para la colección del Herbario TOLI; estas muestras fueron tratadas con alcohol y prensadas en papel periódico, anotando previamente los caracteres que se pueden perder con el secado como son colores, texturas o exudados; simultáneamente, se llevará un registro fotográfico de campo que represente los caracteres más representativos del espécimen. ii. Métodos de laboratorio: En el herbario TOLI, de la Universidad del Tolima, una vez colectado el material vegetal en campo, se procedió al secado en un horno; después de seco el material se determinó con la ayuda de claves taxonómicas como son las publicadas por (Gentry, 1993), (Mendoza y Ramírez, 2000), y (Esquivel y Nieto 2003) entre otros, así como con la ayuda de páginas web como la del Missouri Botanical Garden, INBIO y Muestras Neotropicales de Herbario, y a su vez confrontando con la Colección del Herbario. iii. Análisis de datos: Para el análisis de datos se calculó el porcentaje de abundancia relativa (AR%) para las familias, se determinó la riqueza específica (S) (Moreno, 2001).
5. PLANCTON. Fitoplancton y zooplancton. i. Métodos de campo: Se utilizó una red de malla fina con tamaño de poro definido para fitoplancton de 25 µ, que permiten observar de manera cualitativa las comunidades de plancton existentes en la zona. Con la red los organismos se obtienen por filtración y la selección se realiza según sea el tamaño del poro. La red arrojadiza consta de un tronco con un diámetro de aproximadamente 25 cm y una longitud de 1 m. La red se mantiene de manera subsuperficial por un tiempo de 5 minutos y a una velocidad constante y arrastres lineales, en total en el humedal se hicieron tres arrastres en áreas distintas (Borde 1, Borde 2 y Centro). Las muestras fueron depositadas en frascos de 500 ml y preservadas con formol buferizado al 10%. Adicionalmente se elaboró una ficha de campo en donde se registraron los datos de la localidad y del hábitat de la zona muestreada, además cada una de las estaciones fue descrita y georreferenciada con GPS marca GARMIN. ii. Métodos de laboratorio: Para la evaluación de la muestra se utilizaron cámaras de sedimentación de Ultermohl que constan de cilindros de igual diámetro, con una altura y volumen variable (las dimensiones de las cámaras fueron: fondo 19 mm, altura 30.8 mm y volumen 10 ml), este método facilita observación de los organismos debido a que estos se precipitan. Antes de verter la submuestra en la cámara de conteo, esta se agitó 100 veces para garantizar una distribución aleatoria o de Poisson, posteriormente se realizaron diluciones de 1/10 en cada una de las cámara de sedimentación y se dejó precipitar la muestra durante 24 horas para proceder a la observación microscópica. Para el conteo de los organismos se evaluaron 30 campos que permiten evaluar el 90% de los organismos presentes en la superficie de conteo Los organismos fueron observados bajo microscopio invertido Nikon TMS-F 0.2. La observación se realizó a 40x, y se obtuvo la cantidad de organismos por unidad de volumen requerida. Los organismos fueron observados bajo microscopio invertido Nikon TMS-F 0.2 e identificados taxonómicamente con las claves de: Ramírez (2000), Prescott (1968), Lopretto (1995), Kudo (1976) y Yacobson (1969). iii. Análisis de datos: Se calculó el porcentaje de abundancia relativa para las familias y para los géneros encontrados en el humedal.

Todos los taxones listados fueron identificados mínimo a nivel de clase. En total, se registran 67 especies entre los cinco grupos taxonómicos relacionados (herpetos, macroinvertebrados, mamíferos, plantas y plancton) para el humedal Toqui-Toqui, así: MACROINVERTEBRADOS: Todos lo macroinvertebrados fueron identificados por lo menos a nivel de clase, y en su mayor proporción a nivel de familia. La clase más diversa corresponde a Insecta con 30 taxones reportados, y dentro de esta, la orden Diptera es la que presenta una mayor riqueza. Las clases Bivalvia, Gastropoda y Malacostraca son las menos diversas, con un taxón reportado para cada una.

1. Clitellata
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2. Insecta
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3. Malacostraca
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4. Bivalvia
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5. Gastropoda
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HERPETOS: Se registran once especies agrupadas en ocho géneros, seis familias, tres ordenes y dos clases. La clase Amphibia es la que presenta mayor diversidad, y dentro de esta, las familias Bufonidae y Leptodactylidae, con tres especies cada una.

1. Bufonidae
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2. Hylidae
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3. Leptodactylidae
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4. Alligatoridae
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5. Iguanidae
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6. Sphaerodactylidae
   rank: family
7. Teiidae
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MAMÍFEROS: Se registran 22 especies agrupadas en 20 géneros, nueve familias y seis ordenes. El orden más diverso corresponde a Chiroptera con 13 especies y dentro de este, la familia con mayor riqueza corresponde a Phyllostomidae con diez especies.

1. Canidae
   rank: family
2. Mormoopidae
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3. Phyllostomidae
   rank: family
4. Vespertilionidae
   rank: family
5. Dasypodidae
   rank: family
6. Didelphidae
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7. Leporidae
   rank: family
8. Cricetidae
   rank: family
9. Dasyproctidae
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PLANTAS: Todas se identificaron a nivel de género, y en un 85% nivel de especie. Se reportan 34 especies de plantas vasculares agrupadas en 33 géneros, 24 familias, 18 ordenes y dos clases. La clase que presenta una mayor riqueza corresponde a las dicotiledóneas con 30 especies, y en menor proporción las monocotiledóneas con cuatro especies. Euphorbiaceae y Fabaceae son las familias más diversas en el humedal Toqui-Toqui con cuatro especies cada una.

1. Arecaceae
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2. Commelinaceae
   rank: family
3. Cyclanthaceae
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4. Poaceae
   rank: family
5. Asteraceae
   rank: family
6. Cordiaceae
   rank: family
7. Amaranthaceae
   rank: family
8. Cactaceae
   rank: family
9. Polygonaceae
   rank: family
10. Lecythidaceae
    rank: family
11. Sapotaceae
    rank: family
12. Fabaceae
    rank: family
13. Apocynaceae
    rank: family
14. Gentianaceae
    rank: family
15. Rubiaceae
    rank: family
16. Acanthaceae
    rank: family
17. Bignoniaceae
    rank: family
18. Verbenaceae
    rank: family
19. Siparunaceae
    rank: family
20. Euphorbiaceae
    rank: family
21. Passifloraceae
    rank: family
22. Malvaceae
    rank: family
23. Urticaceae
    rank: family
24. Meliaceae
    rank: family
25. Sapindaceae
    rank: family
26. Solanaceae
    rank: family
27. Vitaceae
    rank: family
28. Zygophyllaceae
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PLANCTON: Se reportan cerca de 49 taxones pertenecientes a los reinos Plantae (16), Chromista (15), Animalia (11), Bacteria (4) y Protozoa (3). El phyllum Ochrophyta (Chromista) es el que presenta la mayor diversidad con 12 géneros.

1. Branchiopoda
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2. Hexanauplia
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3. Eurotatoria
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4. Cyanobacteriia
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5. Tubothalamea
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6. Dinophyceae
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7. Bacillariophyceae
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8. Chrysophyceae
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9. Bryopsida
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10. Zygnematophyceae
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11. Chlorophyceae
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12. Trebouxiophyceae
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13. Euglenoidea
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El humedal Toqui-Toqui se encuentra localizado en el municipio de Piedras, jurisdicción del departamento del Tolima, ocupa una extensión aproximada de 26 ha en una y 176.96 ha en la zona definida como la microcuenca del humedal.